Textiles -- Method for the detection and determination of alkylphenol ethoxylates (APEO)

This document specifies the normal phase liquid chromatography (NPLC) separation method for the qualitative and quantitative analysis of extractable alkylphenol ethoxylates (APEO) in textiles and textile products. This method provides several instrument options for the determination of alkylphenol ethoxylates (APEO) such as normal phase liquid chromatograph with mass spectrometer (NPLC/MS), normal phase liquid chromatograph with fluorescence detector (NPLC/FLD), normal phase liquid chromatograph with charged aerosol detector (NPLC/CAD) and normal phase liquid chromatograph with evaporative light scattering detector (NPLC/ELSD).

Textiles -- Méthode de détection et de détermination des alkylphénols éthoxylés (APEO)

Le présent document spécifie la méthode de séparation par chromatographie liquide en phase normale (CLPN) pour l'analyse qualitative et quantitative des alkylphénols éthoxylés (APEO) extractibles dans les produits textiles et les produits connexes. Cette méthode propose plusieurs options d'instruments pour la détermination des alkylphénols éthoxylés (APEO), notamment la chromatographie liquide en phase normale couplée ŕ un spectromčtre de masse (CLPN-MS), la chromatographie liquide en phase normale couplée ŕ un détecteur de fluorescence (CLPN-FLD), la chromatographie liquide en phase normale couplée ŕ un détecteur d'aérosols chargés (CLPN-CAD) et la chromatographie liquide en phase normale couplée ŕ un détecteur évaporatif ŕ diffusion de lumičre (CLPN-DEDL).

General Information

Status
Published
Publication Date
18-Dec-2018
Current Stage
6060 - International Standard published
Start Date
16-Nov-2018
Completion Date
19-Dec-2018
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ISO 18254-2:2018 - Textiles -- Method for the detection and determination of alkylphenol ethoxylates (APEO)
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ISO 18254-2:2018 - Textiles -- Méthode de détection et de détermination des alkylphénols éthoxylés (APEO)
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Standards Content (sample)

INTERNATIONAL ISO
STANDARD 18254-2
First edition
2018-12
Textiles — Method for the detection
and determination of alkylphenol
ethoxylates (APEO) —
Part 2:
Method using NPLC
Textiles — Méthode de détection et de détermination des alkylphénols
éthoxylés (APEO) —
Partie 2: Méthode utilisant la CLPN
Reference number
ISO 18254-2:2018(E)
ISO 2018
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ISO 18254-2:2018(E)
COPYRIGHT PROTECTED DOCUMENT
© ISO 2018

All rights reserved. Unless otherwise specified, or required in the context of its implementation, no part of this publication may

be reproduced or utilized otherwise in any form or by any means, electronic or mechanical, including photocopying, or posting

on the internet or an intranet, without prior written permission. Permission can be requested from either ISO at the address

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Published in Switzerland
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ISO 18254-2:2018(E)
Contents Page

Foreword ........................................................................................................................................................................................................................................iv

Introduction ..................................................................................................................................................................................................................................v

1 Scope ................................................................................................................................................................................................................................. 1

2 Normative references ...................................................................................................................................................................................... 1

3 Terms and definitions ..................................................................................................................................................................................... 1

4 Principle ........................................................................................................................................................................................................................ 1

5 Reagents ........................................................................................................................................................................................................................ 1

6 Apparatus ..................................................................................................................................................................................................................... 2

7 Procedure..................................................................................................................................................................................................................... 3

7.1 Standard preparation ........................................................................................................................................................................ 3

7.2 Mobile phase for HPLC ..................................................................................................................................................................... 3

7.2.1 Methanol with 0,1 % formic acid and 0,01 % ammonium formate ..................................... 3

7.2.2 Acetonitrile with 0,1 % formic acid ................................................................................................................. 3

7.3 Sample preparation ............................................................................................................................................................................ 3

7.4 Sample extraction ................................................................................................................................................................................. 3

7.5 Sample analysis ...................................................................................................................................................................................... 4

8 Calculation and calibration ....................................................................................................................................................................... 4

8.1 Calculation of contribution percentage of each APEO congener in standard solution ............. 4

8.2 Calculation of concentration of each APEO congener in standard solution ....................................... 4

8.3 Calculation of concentration of each APEO congener in sample ................................................................. 4

8.4 Calculation of total concentration of all APEO congener in sample .......................................................... 5

8.5 Calibration curve ................................................................................................................................................................................... 5

9 Test report ................................................................................................................................................................................................................... 5

Annex A (informative) Examples of chromatographic condition ........................................................................................... 6

Annex B (informative) Examples of solid phase extraction (SPE) procedure for clean up .......................14

Annex C (informative) Results of the interlaboratory test..........................................................................................................15

Annex D (informative) Study of the contribution percentage (mole fraction) of APEO congeners ..16

Bibliography .............................................................................................................................................................................................................................18

© ISO 2018 – All rights reserved iii
---------------------- Page: 3 ----------------------
ISO 18254-2:2018(E)
Foreword

ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards

bodies (ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out

through ISO technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical

committee has been established has the right to be represented on that committee. International

organizations, governmental and non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work.

ISO collaborates closely with the International Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of

electrotechnical standardization.

The procedures used to develop this document and those intended for its further maintenance are

described in the ISO/IEC Directives, Part 1. In particular, the different approval criteria needed for the

different types of ISO documents should be noted. This document was drafted in accordance with the

editorial rules of the ISO/IEC Directives, Part 2 (see www .iso .org/directives).

Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of

patent rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights. Details of

any patent rights identified during the development of the document will be in the Introduction and/or

on the ISO list of patent declarations received (see www .iso .org/patents).

Any trade name used in this document is information given for the convenience of users and does not

constitute an endorsement.

For an explanation of the voluntary nature of standards, the meaning of ISO specific terms and

expressions related to conformity assessment, as well as information about ISO's adherence to the

World Trade Organization (WTO) principles in the Technical Barriers to Trade (TBT) see www .iso

.org/iso/foreword .html.
This document was prepared by Technical Committee ISO/TC 38, Textiles.
A list of all parts in the ISO 18254 series can be found on the ISO website.

Any feedback or questions on this document should be directed to the user’s national standards body. A

complete listing of these bodies can be found at www .iso .org/members .html.
iv © ISO 2018 – All rights reserved
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ISO 18254-2:2018(E)
Introduction

This document specifies the normal phase liquid chromatography (NPLC) separation method for the

quantitative and qualitative analysis of extractable alkylphenol ethoxylates (APEO) in textile and

textile products. NPLC separation method enables alkylphenol ethoxylates to be analysed by high

performance liquid chromatograph (HPLC) with Mass Spectrometer (MS), fluorescence detector (FD),

charged aerosol detector (CAD) and evaporative light scattering detector (ELSD).

A study of the contribution percentage (mole fraction) of APEO congeners is presented in Annex D.

© ISO 2018 – All rights reserved v
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INTERNATIONAL STANDARD ISO 18254-2:2018(E)
Textiles — Method for the detection and determination of
alkylphenol ethoxylates (APEO) —
Part 2:
Method using NPLC

WARNING — This document calls for the use of substances/procedures that may be injurious to

the health/environment if appropriate conditions are not observed. It refers only to technical

suitability and does not absolve the user from legal obligations relating to health and safety/

environment at any stage.
1 Scope

This document specifies the normal phase liquid chromatography (NPLC) separation method for the

qualitative and quantitative analysis of extractable alkylphenol ethoxylates (APEO) in textiles and

textile products.

This method provides several instrument options for the determination of alkylphenol ethoxylates

(APEO) such as normal phase liquid chromatograph with mass spectrometer (NPLC/MS), normal phase

liquid chromatograph with fluorescence detector (NPLC/FLD), normal phase liquid chromatograph

with charged aerosol detector (NPLC/CAD) and normal phase liquid chromatograph with evaporative

light scattering detector (NPLC/ELSD).
2 Normative references
There are no normative references in this document.
3 Terms and definitions
No terms and definitions are listed in this document.

ISO and IEC maintain terminological databases for use in standardization at the following addresses:

— ISO Online browsing platform: available at https: //www .iso .org/obp
— IEC Electropedia: available at http: //www .electropedia .org/
4 Principle

The test specimen is cut into small pieces, transferred to a sample vial and treated with methanol

in ultrasonic water bath. The extract is filtered and collected. Subsequently, the collected extract is

analysed by NPLC/MS, NPLC/FLD, NPLC/CAD or NPLC/ELSD.
5 Reagents
Unless otherwise specified, analytical grade chemicals shall be used.
© ISO 2018 – All rights reserved 1
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ISO 18254-2:2018(E)

5.1 Octylphenol ethoxylates (Triton® X-100), (OPEO) CAS No.9002-93-1, Sigma Aldrich® Part

No.T9284 (see NOTE in 5.2).

5.2 Nonylphenol ethoxylates (IGEPAL® CO-630), (NPEO) CAS No.68412-54-4, Sigma Aldrich® Part

No. 542334.

NOTE The mentioned brand names in 5.1 and 5.2 are given to improve the comparability of the test results

amongst laboratories. Using another batch or another supplier could lead to different results.

5.3 Methanol (HPLC grade).
5.4 Acetonitrile (HPLC grade).
5.5 Acetone (HPLC grade).
5.6 Ammonium formate (HPLC grade).
5.7 Formic acid (HPLC grade).
6 Apparatus
6.1 General

Clean all glassware by rinsing with acetone (5.5) prior to use. Avoid detergents when washing labware.

6.2 Apparatus and auxiliaries for preparing the sample
6.2.1 Standard laboratory equipment.

6.2.2 Analytical balance with resolution of 0,01 g (for test specimen preparation).

6.2.3 Analytical balance with resolution of 0,001 g (for standard preparation).
6.2.4 40 ml Glass vial with screw cap (for sample pre-treatment).
6.2.5 Ultrasonic water bath (to be set up at (70 ± 5) °C).
6.2.6 Disposable syringe and membrane filter (with 0,45 μm pore size or less).
6.2.7 Glass vial (with septum cap for HPLC).
6.2.8 Solid phase extraction (SPE) cartridge for clean up (optional).

The cartridge is packed with a minimum of 200 mg of sorbent (reverse phase or silica).

6.2.9 Solid phase extraction (SPE) vacuum manifold (optional).

1) Triton® is an example of a suitable product available commercially. This information is given for the convenience

of users of this document and does not constitute an endorsement by ISO of this product.

2) IGEPAL® is an example of a suitable product available commercially. This information is given for the

convenience of users of this document and does not constitute an endorsement by ISO of this product.

2 © ISO 2018 – All rights reserved
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ISO 18254-2:2018(E)
6.3 Chromatographic equipment
6.3.1 High performance liquid chromatograph with mass spectrometer (LC/MS), or

6.3.2 High performance liquid chromatograph with fluorescence detector (LC/FLD), or

6.3.3 High performance liquid chromatograph with charged aerosol detector (LC/CAD), or

6.3.4 High performance liquid chromatograph with evaporative light scattering detector

(LC/ELSD).
6.3.4.1 C18 short column for separation of OPEO and NPEO.
Dimension 4,6 mm × 50 mm, Particle size 1,7 μm, equivalent is available.

6.3.4.2 Normal phase column for the separation of each APEO congener by the number of

ethoxylate group.

Hydrogen bond adsorption column, dimension 4,6 mm × 150 mm, particle size 3 μm, equivalent is

available.
7 Procedure
7.1 Standard preparation

The OPEO and NPEO are weighed accurately with analytical balance (6.2.3) and dissolved with methanol

(5.3) containing 1 000 mg/l for stock solution. The reservation condition of solution is suggested to be

in dark and less than 4 °C.
7.2 Mobile phase for HPLC
7.2.1 Methanol with 0,1 % formic acid and 0,01 % ammonium formate

Dissolve 0,1 g of ammonium formate (5.6) in ml of methanol (5.3), subsequently add 1 ml of formic

acid (5.7).
7.2.2 Acetonitrile with 0,1 % formic acid
Add 1 ml of formic acid (5.7) in 1 000 ml of acetonitrile (5.4).
7.3 Sample preparation

The test specimen is cut into pieces with 5 mm × 5 mm and pieces are mixed homogeneously. The

specimen is weighed 1 g to the nearest 0,01 g with analytical balance (6.2.2) and put into the 40 ml

glass vial (6.2.4) for extraction.
7.4 Sample extraction

20 ml of methanol (5.3) are added to sample vial (see 7.3) and then ultrasonic extraction is performed

in ultrasonic water bath (6.2.5) at 70 °C for 60 min. Afterwards the extract is cooled down to room

temperature, 1 ml approximately 2 ml of extract is filtered into HPLC sample vial (6.2.7) using

disposable syringe equipped with membra
...

NORME ISO
INTERNATIONALE 18254-2
Première édition
2018-12
Textiles — Méthode de détection et
de détermination des alkylphénols
éthoxylés (APEO) —
Partie 2:
Méthode utilisant la CLPN
Textiles — Method for the detection and determination of alkylphenol
ethoxylates (APEO) —
Part 2: Method using NPLC
Numéro de référence
ISO 18254-2:2018(F)
ISO 2018
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ISO 18254-2:2018(F)
DOCUMENT PROTÉGÉ PAR COPYRIGHT
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Tous droits réservés. Sauf prescription différente ou nécessité dans le contexte de sa mise en œuvre, aucune partie de cette

publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,

y compris la photocopie, ou la diffusion sur l’internet ou sur un intranet, sans autorisation écrite préalable. Une autorisation peut

être demandée à l’ISO à l’adresse ci-après ou au comité membre de l’ISO dans le pays du demandeur.

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Publié en Suisse
ii © ISO 2018 – Tous droits réservés
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ISO 18254-2:2018(F)
Sommaire Page

Avant-propos ..............................................................................................................................................................................................................................iv

Introduction ..................................................................................................................................................................................................................................v

1 Domaine d’application ................................................................................................................................................................................... 1

2 Références normatives ................................................................................................................................................................................... 1

3 Termes et définitions ....................................................................................................................................................................................... 1

4 Principe .......................................................................................................................................................................................................................... 1

5 Réactifs ........................................................................................................................................................................................................................... 1

6 Appareillage .............................................................................................................................................................................................................. 2

7 Mode opératoire.................................................................................................................................................................................................... 3

7.1 Préparation des étalons .................................................................................................................................................................. 3

7.2 Phase mobile pour CLHP ................................................................................................................................................................ 3

7.2.1 Méthanol avec acide formique à 0,1 % et formiate d’ammonium à 0,01 % ................. 3

7.2.2 Acétonitrile avec acide formique à 0,1 % ................................................................................................... 3

7.3 Préparation de l’échantillon ........................................................................................................................................................ 3

7.4 Extraction de l’échantillon ............................................................................................................................................................ 3

7.5 Analyse de l’échantillon ................................................................................................................................................................... 4

8 Calculs et étalonnage ....................................................................................................................................................................................... 4

8.1 Calcul du pourcentage de contribution de chaque congénère APEO dans la

solution étalon ......................................................................................................................................................................................... 4

8.2 Calcul de la concentration de chaque congénère APEO dans la solution étalon ............................ 4

8.3 Calcul de la concentration de chaque congénère APEO dans l’échantillon ........................................ 5

8.4 Calcul de la concentration totale de tous les congénères APEO dans l’échantillon ..................... 5

8.5 Courbe d’étalonnage .......................................................................................................................................................................... 5

9 Rapport d’essai ....................................................................................................................................................................................................... 5

Annexe A (informative) Exemples de conditions chromatographiques .......................................................................... 7

Annexe B (informative) Exemples de modes opératoires d’extraction en phase solide (SPE)

pour la purification .........................................................................................................................................................................................15

Annexe C (informative) Résultats de l’essai interlaboratoires ...............................................................................................16

Annexe D (informative) Étude du pourcentage de contribution (fraction molaire) des

congénères APEO ..............................................................................................................................................................................................17

Bibliographie ...........................................................................................................................................................................................................................19

© ISO 2018 – Tous droits réservés iii
---------------------- Page: 3 ----------------------
ISO 18254-2:2018(F)
Avant-propos

L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes

nationaux de normalisation (comités membres de l’ISO). L’élaboration des Normes internationales est

en général confiée aux comités techniques de l’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude

a le droit de faire partie du comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales,

gouvernementales et non gouvernementales, en liaison avec l’ISO participent également aux travaux.

L’ISO collabore étroitement avec la Commission électrotechnique internationale (IEC) en ce qui

concerne la normalisation électrotechnique.

Les procédures utilisées pour élaborer le présent document et celles destinées à sa mise à jour sont

décrites dans les Directives ISO/IEC, Partie 1. Il convient, en particulier de prendre note des différents

critères d’approbation requis pour les différents types de documents ISO. Le présent document a été

rédigé conformément aux règles de rédaction données dans les Directives ISO/IEC, Partie 2 (voir www

.iso .org/directives).

L’attention est attirée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l’objet de

droits de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L’ISO ne saurait être tenue pour responsable

de ne pas avoir identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence. Les détails concernant

les références aux droits de propriété intellectuelle ou autres droits analogues identifiés lors de

l’élaboration du document sont indiqués dans l’Introduction et/ou dans la liste des déclarations de

brevets reçues par l’ISO (voir www .iso .org/brevets).

Les appellations commerciales éventuellement mentionnées dans le présent document sont données

pour information, par souci de commodité, à l’intention des utilisateurs et ne sauraient constituer un

engagement.

Pour une explication de la nature volontaire des normes, la signification des termes et expressions

spécifiques de l’ISO liés à l’évaluation de la conformité, ou pour toute information au sujet de l’adhésion

de l’ISO aux principes de l’Organisation mondiale du commerce (OMC) concernant les obstacles

techniques au commerce (OTC), voir le lien suivant: www .iso .org/iso/fr/avant -propos.

Le présent document a été élaboré par le comité technique ISO/TC 38, Textiles.

Une liste de toutes les parties de la série ISO 18254 se trouve sur le site web de l’ISO.

Il convient que l’utilisateur adresse tout retour d’information ou toute question concernant le présent

document à l’organisme national de normalisation de son pays. Une liste exhaustive desdits organismes

se trouve à l’adresse www .iso .org/fr/members .html.
iv © ISO 2018 – Tous droits réservés
---------------------- Page: 4 ----------------------
ISO 18254-2:2018(F)
Introduction

Le présent document spécifie la méthode de séparation par chromatographie liquide en phase normale

(CLPN) pour l’analyse quantitative et qualitative des alkylphénols éthoxylés (APEO) extractibles

dans les produits textiles et les produits connexes. La méthode de séparation CLPN permet l’analyse

des alkylphénols éthoxylés par chromatographie liquide à haute performance (CLHP) couplée à un

spectromètre de masse (SM), à un détecteur de fluorescence (FLD), à un détecteur d’aérosols chargés

(CAD) et à un détecteur évaporatif à diffusion de lumière (DEDL).

Une étude du pourcentage de contribution (fraction molaire) des congénères APEO est présentée à

l’Annexe D.
© ISO 2018 – Tous droits réservés v
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NORME INTERNATIONALE ISO 18254-2:2018(F)
Textiles — Méthode de détection et de détermination des
alkylphénols éthoxylés (APEO) —
Partie 2:
Méthode utilisant la CLPN
AVERTISSEMENT — Le présent document nécessite l’utilisation de substances/modes

opératoires qui peuvent être préjudiciables à la santé et/ou à l’environnement en cas de non-

respect des conditions appropriées. Il fait uniquement référence à l’aptitude technique et ne

dispense aucunement l’utilisateur de satisfaire à tout moment aux obligations légales en matière

de santé, de sécurité et d’environnement.
1 Domaine d’application

Le présent document spécifie la méthode de séparation par chromatographie liquide en phase normale

(CLPN) pour l’analyse qualitative et quantitative des alkylphénols éthoxylés (APEO) extractibles dans

les produits textiles et les produits connexes.

Cette méthode propose plusieurs options d’instruments pour la détermination des alkylphénols

éthoxylés (APEO), notamment la chromatographie liquide en phase normale couplée à un spectromètre

de masse (CLPN-MS), la chromatographie liquide en phase normale couplée à un détecteur de

fluorescence (CLPN-FLD), la chromatographie liquide en phase normale couplée à un détecteur

d’aérosols chargés (CLPN-CAD) et la chromatographie liquide en phase normale couplée à un détecteur

évaporatif à diffusion de lumière (CLPN-DEDL).
2 Références normatives
Le présent document ne contient aucune référence normative.
3 Termes et définitions
Aucun terme n’est défini dans le présent document.

L’ISO et l’IEC tiennent à jour des bases de données terminologiques destinées à être utilisées en

normalisation, consultables aux adresses suivantes:

— ISO Online browsing platform: disponible à l’adresse https: //www .iso .org/obp;

— IEC Electropedia: disponible à l’adresse http: //www .electropedia .org/.
4 Principe

L’éprouvette est coupée en petits morceaux, placée dans un flacon pour échantillon puis traitée avec du

méthanol dans un bain-marie à ultrasons. L’extrait est filtré, collecté, puis analysé par CLPN-SM, CLPN-

FLD, CLPN-CAD ou CLPN-DEDL.
5 Réactifs

Sauf indication contraire, des produits chimiques de qualité analytique doivent être utilisés.

© ISO 2018 – Tous droits réservés 1
---------------------- Page: 6 ----------------------
ISO 18254-2:2018(F)

5.1 Octylphénols éthoxylés (Triton® X-100), (OPEO) n° CAS 9002-93-1, référence Sigma Aldrich®

T9284 (voir NOTE en 5.2).

5.2 Nonylphénols éthoxylés (IGEPAL® CO-630), (NPEO) n° CAS 68412-54-4, référence Sigma

Aldrich® 542334.

NOTE Les noms de marque mentionnés en 5.1 et 5.2 sont donnés afin d’optimiser la comparabilité des

résultats d’essai entre laboratoires. L’utilisation d’un autre lot ou d’un autre fournisseur peut mener à des

résultats différents.
5.3 Méthanol (de qualité CLHP).
5.4 Acétonitrile (de qualité CLHP).
5.5 Acétone (de qualité CLHP).
5.6 Formiate d’ammonium (de qualité CLHP).
5.7 Acide formique (de qualité CLHP).
6 Appareillage
6.1 Généralités

Nettoyer l’ensemble de la verrerie en la rinçant à l’acétone (5.5) avant toute utilisation. Éviter l’emploi

de détergents lors du lavage du matériel de laboratoire.
6.2 Appareillage et équipement auxiliaire pour la préparation de l’échantillon
6.2.1 Matériel de laboratoire courant.

6.2.2 Balance analytique d’une résolution de 0,01 g (pour la préparation des éprouvettes).

6.2.3 Balance analytique d’une résolution de 0,001 g (pour la préparation des étalons).

6.2.4 Flacon en verre avec bouchon à vis d’une capacité de 40 ml (pour le prétraitement des

échantillons).
6.2.5 Bain-marie à ultrasons (maintenu à (70 ± 5) °C).

6.2.6 Seringue jetable et filtre à membrane (avec un diamètre de pore de 0,45 μm ou moins).

6.2.7 Flacon en verre (avec bouchon à septum pour CLHP).

6.2.8 Cartouche d’extraction en phase solide (SPE) pour la purification (facultatif).

La cartouche contient au minimum 200 mg d’adsorbant (phase inverse ou silice).

1) Triton® est un exemple de produit convenable disponible dans le commerce. Cette information est donnée par

souci de commodité à l’intention des utilisateurs du présent document et ne saurait constituer un engagement de

l’ISO à l’égard de ce produit.

2) IGEPAL® est un exemple de produit convenable disponible dans le commerce. Cette information est donnée par

souci de commodité à l’intention des utilisateurs du présent document et ne saurait constituer un engagement de

l’ISO à l’égard de ce produit.
2 © ISO 2018 – Tous droits réservés
---------------------- Page: 7 ----------------------
ISO 18254-2:2018(F)
6.2.9 Cuve d’extraction en phase solide (SPE) (facultatif).
6.3 Équipement de chromatographie

6.3.1 Chromatographe liquide à haute performance couplé à un spectromètre de masse (CL-SM),

6.3.2 Chromatographe liquide à haute performance couplé à un détecteur de fluorescence (CL-

FLD), ou

6.3.3 Chromatographe liquide à haute performance couplé à un détecteur d’aérosols chargés

(CL-CAD), ou

6.3.4 Chromatographe liquide à haute performance couplé à un détecteur évaporatif à diffusion

de lumière (CL-DEDL).
6.3.4.1 Colonne courte C18 pour la séparation des OPEO et des NPEO.

Un équivalent, de dimensions 4,6 mm × 50 mm et de granulométrie 1,7 μm, est disponible.

6.3.4.2 Colonne en phase normale pour la séparation de chaque congénère APEO en fonction du

groupe d’éthoxylés.

Un équivalent, à savoir une colonne d’adsorption par liaisons hydrogènes, de dimensions

4,6 mm × 150 mm et de granulométrie 3 μm, est disponible.
7 Mode opératoire
7.1 Préparation des étalons

Peser les OPEO et NPEO avec précision sur la balance analytique (6.2.3) et les dissoudre dans du

méthanol (5.3) pour obtenir une solution mère à 1 000 mg/l. Il est conseillé de conserver la solution à

l’abri de la lumière et à une température inférieure à 4 °C.
7.2 Phase mobile pour CLHP
7.2.1 Méthanol avec acide formique à 0,1 % et formiate d’ammonium à 0,01 %

Dissoudre 0,1 g de formiate d’ammonium (5.6) dans xxx ml de méthanol (5.3), puis ajouter 1 ml d’acide

formique (5.7).
7.2.2 Acétonitrile avec acide formique à 0,1 %
Ajouter 1 ml d’acide formique (5.7) dans 1 000 ml d’acétonitrile (5.4).
7.3 Préparation de l’échantillon

Couper l’éprouvette en morceaux de 5 mm × 5 mm et les mélanger de manière homogène. À l’aide de la

balance analytique (6.2.2), peser pour obtenir un échantillon de 1 g, à 0,01 g près, et le placer dans le

flacon en verre de 40 ml (6.2.4) pour extraction.
7.4 Extraction de l’échantillon

Ajouter 20 ml de méthanol (5.3) dans le flacon pour échantillon (voir 7.3) puis procéder à l’extraction

par ultrasons en plaçant le flacon dans un bain
...

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