ISO 10520:1997

Native starch — Determination of starch content — Ewers polarimetric method

Amidons et fécules natifs — Dosage de l'amidon — Méthode polarimétrique de Ewers

La présente Norme internationale prescrit une méthode polarimétrique pour le dosage de l'amidon dans les amidons et fécules natifs, à l'exception de l'amidon à haute teneur en amylose. Elle n'est pas applicable aux amidons modifiés ou prégélatinés (solubles dans l'eau).

General Information

• Status: Published
• Publication Date: 27-Aug-1997
• ICS: 67.180.20 - Starch and derived products
• Technical Committee: ISO/TC 93 - Starch (including derivatives and by-products)
• Drafting Committee: ISO/TC 93 - Starch (including derivatives and by-products)
• Current Stage: 9093 - International Standard confirmed
• Completion Date: 11-Sep-2024

Standards Content (Sample)

INTERNATIONAL IS0
STANDARD
First edition
1997-09-01
Native starch - Determination of starch
content - Ewers polarimetric method
Amidons et f&u/es natifs - Dosage de l’amidon - Mkthode polarim&rique
de Ewers
Reference number
IS0 10520: 1997(E)
IS0 10520:1997(E)
Foreword
IS0 (the International Organization for Standardization) is a worldwide
federation of national standards bodies (IS0 member bodies). The work of
preparing International Standards is normally carried out through IS0
technical committees. Each member body interested in a subject for which
a technical committee has been established has the right to be
represented on that committee. International organizations, governmental
and non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work. IS0
collaborates closely with the International Electrotechnical Commission
(IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
Draft International Standards adopted by the technical committees are
circulated to the member bodies for voting. Publication as an International
Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting
a vote.
International Standard IS0 10520 was prepared by Technical Committee
ISOflC 93, Starch (including derivatives and by-products).
Annexes A and B of this International Standard are for information only.
0 IS0 1997
All rights reserved. Unless otherwise specified, no part of this publication may be
reproduced or utilized in any form or by any means, electronic or mechanical, induding
photocopying and microfilm, without permission in writing from the publisher.
International Organization for Standardization
Case postale 56 l CH-1211 Gen&ve 20 l Switzerland
Internet central @ iso.ch
x.400 c=ch; a=4OOnet; p=iso; o=isocs; s=central
Printed in Switzerland
ii
IS0 10520: 1997(E)
INTERNATIONAL STANDARD @ IS0
Native starch - Determination of starch content -
Ewers polarimetric method
1 Scope
This International Standard specifies a polarimetric method for the determination of the starch
content of native starch, with the exception of starch with high amylose content.
It is not applicable to modified or pregelatinized (water-soluble) starch.
2 Normative references
The following standards contain provisions which, through reference in this text, constitute
provisions of this International Standard. At the time of publication, the editions indicated were
valid. All standards are subject to revision, and parties to agreements based on this International
Standard are encouraged to investigate the possibility of applying the most recent editions of the
standards indicated below. Members of IEC and IS0 maintain registers of currently valid
International Standards.
Starch - Determination of moisture content - Oven-drying method
IS0 1666: 1996,
IS0 3696: 1987, Water for analytical laboratory use - Specification and test methods
3 Principle
The method includes two intermediate determination steps.
3.1 A portion of the sample is hydrolysed with dilute hydrochloric acid and the optical rotation
measured polarimetrically after clarification and filtration.
3.2 A second portion of the sample is treated with 40 % (VN) ethanol to extract soluble sugars
and polysaccharides of lower molecular mass. The filtrate is then subjected to the procedure given
in 3.1.
The difference between the measurements 3.1 and 3.2, multiplied by a factor, gives the starch
content of the sample.
NOTE - Key parameters of the method are the time and temperature of the hydrolysis, and the correct use
and calibration of the polarimeter. Consequently, the method includes constant agitation in the water bath,
which should be of a size appropriate to ensure rapid temperature rise and steady temperature conditions.

@ IS0
IS0 10520:1997(E)
4 Reagents
Use only reagents of recognized analytical grade, unless otherwise specified, and water complying
with grade 2 in accordance with IS0 3696.
4.1 Dilute hydrochloric acid, c(HCI) = 7,7 mol/l
Dilute 63,7 ml of hydrochloric acid (~20 = 1,19 g/ml) with water up to 100 ml.
4.2 Dilute hydrochloric acid, c(HCI) = 0,309 mol/l
1,19 g/ml) with water up to 1 000 ml.
Dilute 25,6 ml of hydrochloric acid (pgO =
NOTE -The concentration should be verified using sodium hydroxide solution [c(NaOH) = 0,l mol/l] and
Methyl red as indicator: 10 ml HCI should consume 30,94 ml of 0,l mol/l NaOH.
4.3 Dilute ethanol, 40 % (V/v) (pzo = 0,948 g/ml)
4.4 Carrez solution I
Dissolve 10,6 g of potassium hexacyanoferrate(ll) trihydrate [K4[Fe(CN),].3H20] in water. Dilute to
100 ml with water.
4.5 Carrez solution II
Dissolve 21,9 g of zinc acetate dihydrate [Zn(CH,C00),.2H,O] and 3 g of glacial acetic acid in
water. Dilute to 100 ml with water.
5 Apparatus
Usual laboratory apparatus and, in particular, the following.
5.1 Volumetric flasks, of capacity 100 ml.
5.2 Shaking boiling water bath, or boiling water bath equipped with a magnetic stirrer.
5.3 Polarimeter, adjusted to a wavelength of 589,3 nm, with 200 mm tubes.
54 . Analytical balance, capable of weighing to the nearest 0,001 g.
6 Preparation of test sample
If the particle size of the laboratory sample exceeds 0,5 mm, grind the sample to pass a sieve with
0,5 mm apertures. Homogenize the sample thus prepared.
IS0 10520: 1997(E)
0 IS0
Procedure
Carry out weighings to the nearest 0,001 g (see 5.4).
7.1 Determination of optical rotation of a total portion
7.1.1 Weigh 2,5 g + 0,05 g (m,) of the test sample and transfer it to a volumetric flask (5.1). Add
25 ml of the dilutehydrochloric acid (4.2) and agitate to distribute the test sample evenly. Add a
further 25 ml of the dilute hydrochloric acid (4.2).
7.1.2 Immerse the flask in the boiling water bath (5.2) and shake continuously or immerse the
flask in the boiling water bath equipped with a magnetic stirrer and stir at minimum speed.
7.1.3 Leave the flask for 15 min of: 5 s in the boiling water bath and stop shaking or stirring shortly
before removing it. Immediately add 30 ml of cold water and cool rapidly under flowing water to
20 “C * 2 “C
7.1.4 Add 5 ml of the Carrez solution I (4.4) and shake for 1 min.
7.1.5 Add 5 ml of the Carrez solution II (4.5) and shake for 1 min.
7.1.6 Dilute to the mark with water. Homogenize and filter the solution through a suitable filter
funnel and paper. If the filtrate is not perfectly clear, repeat the operations with 10 ml of each of
the Carrez solutions.
7.1.7 Measure the optical rotation (a,) of the solution in a 200 mm tube with the polarimeter (5.3).
7.2 Determination of optical rotation of substances soluble in 40 o/o (VN) ethanol
7.2.1 Weigh 5 g + 0,l g (m2) of the sample and transfer to a 100 ml volumetric flask (5.1). Add
about 80 ml of the ethanol solution (4.3). Leave the flask to stand for 1 h at room temperature;
shake vigorously six times during the hour to ensure thorough mixi
...

INTERNATIONAL IS0
STANDARD
First edition
1997-09-01
Native starch - Determination of starch
content - Ewers polarimetric method
Amidons et f&u/es natifs - Dosage de l’amidon - Mkthode polarim&rique
de Ewers
Reference number
IS0 10520: 1997(E)
IS0 10520:1997(E)
Foreword
IS0 (the International Organization for Standardization) is a worldwide
federation of national standards bodies (IS0 member bodies). The work of
preparing International Standards is normally carried out through IS0
technical committees. Each member body interested in a subject for which
a technical committee has been established has the right to be
represented on that committee. International organizations, governmental
and non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work. IS0
collaborates closely with the International Electrotechnical Commission
(IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
Draft International Standards adopted by the technical committees are
circulated to the member bodies for voting. Publication as an International
Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting
a vote.
International Standard IS0 10520 was prepared by Technical Committee
ISOflC 93, Starch (including derivatives and by-products).
Annexes A and B of this International Standard are for information only.
0 IS0 1997
All rights reserved. Unless otherwise specified, no part of this publication may be
reproduced or utilized in any form or by any means, electronic or mechanical, induding
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IS0 10520: 1997(E)
INTERNATIONAL STANDARD @ IS0
Native starch - Determination of starch content -
Ewers polarimetric method
1 Scope
This International Standard specifies a polarimetric method for the determination of the starch
content of native starch, with the exception of starch with high amylose content.
It is not applicable to modified or pregelatinized (water-soluble) starch.
2 Normative references
The following standards contain provisions which, through reference in this text, constitute
provisions of this International Standard. At the time of publication, the editions indicated were
valid. All standards are subject to revision, and parties to agreements based on this International
Standard are encouraged to investigate the possibility of applying the most recent editions of the
standards indicated below. Members of IEC and IS0 maintain registers of currently valid
International Standards.
Starch - Determination of moisture content - Oven-drying method
IS0 1666: 1996,
IS0 3696: 1987, Water for analytical laboratory use - Specification and test methods
3 Principle
The method includes two intermediate determination steps.
3.1 A portion of the sample is hydrolysed with dilute hydrochloric acid and the optical rotation
measured polarimetrically after clarification and filtration.
3.2 A second portion of the sample is treated with 40 % (VN) ethanol to extract soluble sugars
and polysaccharides of lower molecular mass. The filtrate is then subjected to the procedure given
in 3.1.
The difference between the measurements 3.1 and 3.2, multiplied by a factor, gives the starch
content of the sample.
NOTE - Key parameters of the method are the time and temperature of the hydrolysis, and the correct use
and calibration of the polarimeter. Consequently, the method includes constant agitation in the water bath,
which should be of a size appropriate to ensure rapid temperature rise and steady temperature conditions.

@ IS0
IS0 10520:1997(E)
4 Reagents
Use only reagents of recognized analytical grade, unless otherwise specified, and water complying
with grade 2 in accordance with IS0 3696.
4.1 Dilute hydrochloric acid, c(HCI) = 7,7 mol/l
Dilute 63,7 ml of hydrochloric acid (~20 = 1,19 g/ml) with water up to 100 ml.
4.2 Dilute hydrochloric acid, c(HCI) = 0,309 mol/l
1,19 g/ml) with water up to 1 000 ml.
Dilute 25,6 ml of hydrochloric acid (pgO =
NOTE -The concentration should be verified using sodium hydroxide solution [c(NaOH) = 0,l mol/l] and
Methyl red as indicator: 10 ml HCI should consume 30,94 ml of 0,l mol/l NaOH.
4.3 Dilute ethanol, 40 % (V/v) (pzo = 0,948 g/ml)
4.4 Carrez solution I
Dissolve 10,6 g of potassium hexacyanoferrate(ll) trihydrate [K4[Fe(CN),].3H20] in water. Dilute to
100 ml with water.
4.5 Carrez solution II
Dissolve 21,9 g of zinc acetate dihydrate [Zn(CH,C00),.2H,O] and 3 g of glacial acetic acid in
water. Dilute to 100 ml with water.
5 Apparatus
Usual laboratory apparatus and, in particular, the following.
5.1 Volumetric flasks, of capacity 100 ml.
5.2 Shaking boiling water bath, or boiling water bath equipped with a magnetic stirrer.
5.3 Polarimeter, adjusted to a wavelength of 589,3 nm, with 200 mm tubes.
54 . Analytical balance, capable of weighing to the nearest 0,001 g.
6 Preparation of test sample
If the particle size of the laboratory sample exceeds 0,5 mm, grind the sample to pass a sieve with
0,5 mm apertures. Homogenize the sample thus prepared.
IS0 10520: 1997(E)
0 IS0
Procedure
Carry out weighings to the nearest 0,001 g (see 5.4).
7.1 Determination of optical rotation of a total portion
7.1.1 Weigh 2,5 g + 0,05 g (m,) of the test sample and transfer it to a volumetric flask (5.1). Add
25 ml of the dilutehydrochloric acid (4.2) and agitate to distribute the test sample evenly. Add a
further 25 ml of the dilute hydrochloric acid (4.2).
7.1.2 Immerse the flask in the boiling water bath (5.2) and shake continuously or immerse the
flask in the boiling water bath equipped with a magnetic stirrer and stir at minimum speed.
7.1.3 Leave the flask for 15 min of: 5 s in the boiling water bath and stop shaking or stirring shortly
before removing it. Immediately add 30 ml of cold water and cool rapidly under flowing water to
20 “C * 2 “C
7.1.4 Add 5 ml of the Carrez solution I (4.4) and shake for 1 min.
7.1.5 Add 5 ml of the Carrez solution II (4.5) and shake for 1 min.
7.1.6 Dilute to the mark with water. Homogenize and filter the solution through a suitable filter
funnel and paper. If the filtrate is not perfectly clear, repeat the operations with 10 ml of each of
the Carrez solutions.
7.1.7 Measure the optical rotation (a,) of the solution in a 200 mm tube with the polarimeter (5.3).
7.2 Determination of optical rotation of substances soluble in 40 o/o (VN) ethanol
7.2.1 Weigh 5 g + 0,l g (m2) of the sample and transfer to a 100 ml volumetric flask (5.1). Add
about 80 ml of the ethanol solution (4.3). Leave the flask to stand for 1 h at room temperature;
shake vigorously six times during the hour to ensure thorough mixi
...

NORME
ISO
INTERNATIONALE
Première édition
1997-09-01
Amidons,et fécules natifs - Dosage
de l’amidon - Méthode polarimétrique
de Ewers
Native starch - Determination of starch content - Ewers polarimetric
method
Numéro de référence
ISO 10520: 1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée ‘aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale. ISO 10520 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 93, Amidon (amidons, fécules),
dérivés et sous-produits.
Les annexes A et B de la présente Norme internationale sont données uniquement à titre d’information.
0 ISO 1997
de reproduction resewes. Sauf prescription différente, aucune
Droits partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque
forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Geneve 20 l Suisse
central @ iso.ch
Internet
x.400 c=ch; a=4OOnet; p=iso; o=isocs; s=central
Imprimé en Suisse
ii
NORME INTERNATIONALE o ISO ISO 10520:1997(F)
Amidons et fécules natifs - Dosage de l’amidon - Méthode
polarimétrique de Ewers
1 Domaine d’application
La présente Norme internationale prescrit une méthode polarimétrique pour le dosage de l’amidon dans les
amidons et fécules natifs, à l’exception de l’amidon à haute teneur en amylose.
Elle n’est pas applicable aux amidons modifiés ou prégélatinés (solubles dans l’eau).
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente Norme internationale. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette a révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
Norme internationale sont invitées a rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 1666:1996, Amidon et fécule - Détermination de l’humidité - Méthode par séchage à /‘étuve.
Spécification et méthodes d’essai.
ISO 3696:1987, Eau pour laboratoire à usage analytique -
3 Principe
La méthode comprend deux étapes de détermination:
3.1 Hydrolyse d’une portion de l’échantillon a l’aide d’acide chlorhydrique dilué, puis clarification et filtration, puis
mesurage de la rotation optique par polarimétrie.
3.2 Reprise d’une deuxiéme portion de l’echantillon avec de I’éthanol à 40 % (V/V) pour en extraire les sucres et
les polysaccharides de faible masse moléculaire. Le filtrat est alors soumis au mode opératoire de 3.1.
La différence entre les deux mesurages obtenus en 3.1 et 3.2 est multipliée par un facteur et donne ainsi la teneur
en amidon de l’échantillon.
NOTE - Les paramètres clés de cette méthode sont la durée et la température de l’hydrolyse, ainsi que le bon usage et
l’étalonnage correct du potarimètre. La méthode a donc été conçue de sorte à permettre une agitation constante du bain d’eau
dont il convient de choisir le volume de manière à assurer une montée rapide en temperature et une stabilisation des
conditions de température.
4 Réactifs
Sauf indication différente, utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, et de l’eau de qualité 2,
conformément à I’ISO 3696.
0 ISO
Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 7,7 mol/l.
4.1
1,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 100 ml.
Diluer 63,7 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
4.2 Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 0,309 mol/l.
1 ,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 1 000 ml.
Diluer 256 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
NOTE - Vérifier la concentration à l’aide d’une solution d’hydroxyde de sodium [C(NaOH) = 0,l molA] et du rouge de méthyle
comme indicateur: il convient que 10 ml de HCI réagissent avec 30,94 ml de NaOH à 0,l mol/l.
4.3 Éthanol dilué, à 40 % (V/V) (pzo = 0,948 g/ml).
4.4 Solution de Carrez 1
Mettre en solution dans de l’eau 10,6 g d’hexacyanoferrate(I1) de potassium trihydraté [K4[(Fe(CN),],3H,0].
Compléter à 100 ml avec de l’eau.
4.5 Solution de Carrez II
Mettre en solution dans de l’eau 21,9 g d’acétate de zinc dihydraté [Zn(CH&O0),,2H,O] et 3 g d’acide acétique
cristallisable. Compléter à 100 ml avec de l’eau.
5 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et, en particulier, ce qui suit.
5.1 Fioles jaugées, de 100 ml.
5.2 Bain-marie bouillant agité ou bain-marie bouillant équipé d’un agitateur magnétique.
5.3 Polarimètre, réglé à une longueur d’onde de 589,3 nm, équipé de tubes de 200 mm.
5.4 Balance analytique, capable de peser à 0,001 g près.
6 Préparation de l’échantillon pour essai
Si la taille de l’échantillon pour laboratoire dépasse 05 mm, broyer l’échantillon afin qu’il passe au travers d’un tamis
de 05 mm d’ouverture de maille. Homogénéiser l’échantillon pour essai ainsi préparé.
7 Mode opératoire
Effectuer les pesées à 0,001 g près (voir 5.4).
7.1 Détermination de la rotation optique d’une prise d’essai totale
7.1.1 Peser 2,5 g + 0,05 g d’échantillon pour essai (ml) et transférer dans une fiole jaugée (5.1). Ajouter 25 ml
d’acide chlorhydrique dilué (4.2) et agiter pour répartir l’échantillon pour essai de façon uniforme. Ajouter encore
25 ml d’acide chlorhydrique dilué (4.2).
7.1.2 Plonger la fiole dans le bain-marie bouillant (5.2) et agiter en continu ou plonger la fiole dans le bain-marie
bouillant équipé d’un agitateur magnétique et remuer à faible vitesse.
7.1.3 Laisser la fiole 15 min + 5 s dans le bain-marie et arrêter d’agiter ou de remuer juste avant de la retirer du
bain-marie. Ajouter immédiatement 30 ml d’eau froide et refroidir rapidement sous l’eau courante à 20 OC k 2 OC.

0 ISO ISO 10520: 1997(F)
7.1.4 Ajouter 5 ml de solution de Carrez 1 (4.4) et agiter pendant 1 min.
7.1.5 Ajouter 5 ml de solution de Carrez II (4.5) et agiter pendant 1 min.
7.1.6 Compléter au volume avec de l’eau, homogénéiser et filtrer sur un entonnoir garni d’un papier filtre approprié.
Si le filtrat n’est pas parfaitement clair, répéter les étapes depuis 7.1 .l avec 10 ml de chacune des deux solutions
de Carrez.
7.1.7 Mesurer la rotation optique (a,) de la solution dans un tube de 200 mm à l’aide du polarimètre (5.3).
7.2 Détermination de la rotation optique des substances solubles dans I’éthanol à 40 % (WV)
7.2.1 Peser 5 g + 0,l g d’échantillon pour essai (m2) et transférer dans une fiole jaugée de 100 ml (5.1). Ajouter à
la fiole environ 80 ml d’éthanol dilué (4.3). Laisser la fiole reposer pendant 1 h à tempér
...

NORME
ISO
INTERNATIONALE
Première édition
1997-09-01
Amidons,et fécules natifs - Dosage
de l’amidon - Méthode polarimétrique
de Ewers
Native starch - Determination of starch content - Ewers polarimetric
method
Numéro de référence
ISO 10520: 1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée ‘aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale. ISO 10520 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 93, Amidon (amidons, fécules),
dérivés et sous-produits.
Les annexes A et B de la présente Norme internationale sont données uniquement à titre d’information.
0 ISO 1997
de reproduction resewes. Sauf prescription différente, aucune
Droits partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque
forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Geneve 20 l Suisse
central @ iso.ch
Internet
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NORME INTERNATIONALE o ISO ISO 10520:1997(F)
Amidons et fécules natifs - Dosage de l’amidon - Méthode
polarimétrique de Ewers
1 Domaine d’application
La présente Norme internationale prescrit une méthode polarimétrique pour le dosage de l’amidon dans les
amidons et fécules natifs, à l’exception de l’amidon à haute teneur en amylose.
Elle n’est pas applicable aux amidons modifiés ou prégélatinés (solubles dans l’eau).
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente Norme internationale. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette a révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
Norme internationale sont invitées a rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 1666:1996, Amidon et fécule - Détermination de l’humidité - Méthode par séchage à /‘étuve.
Spécification et méthodes d’essai.
ISO 3696:1987, Eau pour laboratoire à usage analytique -
3 Principe
La méthode comprend deux étapes de détermination:
3.1 Hydrolyse d’une portion de l’échantillon a l’aide d’acide chlorhydrique dilué, puis clarification et filtration, puis
mesurage de la rotation optique par polarimétrie.
3.2 Reprise d’une deuxiéme portion de l’echantillon avec de I’éthanol à 40 % (V/V) pour en extraire les sucres et
les polysaccharides de faible masse moléculaire. Le filtrat est alors soumis au mode opératoire de 3.1.
La différence entre les deux mesurages obtenus en 3.1 et 3.2 est multipliée par un facteur et donne ainsi la teneur
en amidon de l’échantillon.
NOTE - Les paramètres clés de cette méthode sont la durée et la température de l’hydrolyse, ainsi que le bon usage et
l’étalonnage correct du potarimètre. La méthode a donc été conçue de sorte à permettre une agitation constante du bain d’eau
dont il convient de choisir le volume de manière à assurer une montée rapide en temperature et une stabilisation des
conditions de température.
4 Réactifs
Sauf indication différente, utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, et de l’eau de qualité 2,
conformément à I’ISO 3696.
0 ISO
Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 7,7 mol/l.
4.1
1,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 100 ml.
Diluer 63,7 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
4.2 Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 0,309 mol/l.
1 ,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 1 000 ml.
Diluer 256 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
NOTE - Vérifier la concentration à l’aide d’une solution d’hydroxyde de sodium [C(NaOH) = 0,l molA] et du rouge de méthyle
comme indicateur: il convient que 10 ml de HCI réagissent avec 30,94 ml de NaOH à 0,l mol/l.
4.3 Éthanol dilué, à 40 % (V/V) (pzo = 0,948 g/ml).
4.4 Solution de Carrez 1
Mettre en solution dans de l’eau 10,6 g d’hexacyanoferrate(I1) de potassium trihydraté [K4[(Fe(CN),],3H,0].
Compléter à 100 ml avec de l’eau.
4.5 Solution de Carrez II
Mettre en solution dans de l’eau 21,9 g d’acétate de zinc dihydraté [Zn(CH&O0),,2H,O] et 3 g d’acide acétique
cristallisable. Compléter à 100 ml avec de l’eau.
5 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et, en particulier, ce qui suit.
5.1 Fioles jaugées, de 100 ml.
5.2 Bain-marie bouillant agité ou bain-marie bouillant équipé d’un agitateur magnétique.
5.3 Polarimètre, réglé à une longueur d’onde de 589,3 nm, équipé de tubes de 200 mm.
5.4 Balance analytique, capable de peser à 0,001 g près.
6 Préparation de l’échantillon pour essai
Si la taille de l’échantillon pour laboratoire dépasse 05 mm, broyer l’échantillon afin qu’il passe au travers d’un tamis
de 05 mm d’ouverture de maille. Homogénéiser l’échantillon pour essai ainsi préparé.
7 Mode opératoire
Effectuer les pesées à 0,001 g près (voir 5.4).
7.1 Détermination de la rotation optique d’une prise d’essai totale
7.1.1 Peser 2,5 g + 0,05 g d’échantillon pour essai (ml) et transférer dans une fiole jaugée (5.1). Ajouter 25 ml
d’acide chlorhydrique dilué (4.2) et agiter pour répartir l’échantillon pour essai de façon uniforme. Ajouter encore
25 ml d’acide chlorhydrique dilué (4.2).
7.1.2 Plonger la fiole dans le bain-marie bouillant (5.2) et agiter en continu ou plonger la fiole dans le bain-marie
bouillant équipé d’un agitateur magnétique et remuer à faible vitesse.
7.1.3 Laisser la fiole 15 min + 5 s dans le bain-marie et arrêter d’agiter ou de remuer juste avant de la retirer du
bain-marie. Ajouter immédiatement 30 ml d’eau froide et refroidir rapidement sous l’eau courante à 20 OC k 2 OC.

0 ISO ISO 10520: 1997(F)
7.1.4 Ajouter 5 ml de solution de Carrez 1 (4.4) et agiter pendant 1 min.
7.1.5 Ajouter 5 ml de solution de Carrez II (4.5) et agiter pendant 1 min.
7.1.6 Compléter au volume avec de l’eau, homogénéiser et filtrer sur un entonnoir garni d’un papier filtre approprié.
Si le filtrat n’est pas parfaitement clair, répéter les étapes depuis 7.1 .l avec 10 ml de chacune des deux solutions
de Carrez.
7.1.7 Mesurer la rotation optique (a,) de la solution dans un tube de 200 mm à l’aide du polarimètre (5.3).
7.2 Détermination de la rotation optique des substances solubles dans I’éthanol à 40 % (WV)
7.2.1 Peser 5 g + 0,l g d’échantillon pour essai (m2) et transférer dans une fiole jaugée de 100 ml (5.1). Ajouter à
la fiole environ 80 ml d’éthanol dilué (4.3). Laisser la fiole reposer pendant 1 h à tempér
...

NORME
ISO
INTERNATIONALE
Première édition
1997-09-01
Amidons,et fécules natifs - Dosage
de l’amidon - Méthode polarimétrique
de Ewers
Native starch - Determination of starch content - Ewers polarimetric
method
Numéro de référence
ISO 10520: 1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée ‘aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale. ISO 10520 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 93, Amidon (amidons, fécules),
dérivés et sous-produits.
Les annexes A et B de la présente Norme internationale sont données uniquement à titre d’information.
0 ISO 1997
de reproduction resewes. Sauf prescription différente, aucune
Droits partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque
forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Geneve 20 l Suisse
central @ iso.ch
Internet
x.400 c=ch; a=4OOnet; p=iso; o=isocs; s=central
Imprimé en Suisse
ii
NORME INTERNATIONALE o ISO ISO 10520:1997(F)
Amidons et fécules natifs - Dosage de l’amidon - Méthode
polarimétrique de Ewers
1 Domaine d’application
La présente Norme internationale prescrit une méthode polarimétrique pour le dosage de l’amidon dans les
amidons et fécules natifs, à l’exception de l’amidon à haute teneur en amylose.
Elle n’est pas applicable aux amidons modifiés ou prégélatinés (solubles dans l’eau).
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente Norme internationale. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette a révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
Norme internationale sont invitées a rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 1666:1996, Amidon et fécule - Détermination de l’humidité - Méthode par séchage à /‘étuve.
Spécification et méthodes d’essai.
ISO 3696:1987, Eau pour laboratoire à usage analytique -
3 Principe
La méthode comprend deux étapes de détermination:
3.1 Hydrolyse d’une portion de l’échantillon a l’aide d’acide chlorhydrique dilué, puis clarification et filtration, puis
mesurage de la rotation optique par polarimétrie.
3.2 Reprise d’une deuxiéme portion de l’echantillon avec de I’éthanol à 40 % (V/V) pour en extraire les sucres et
les polysaccharides de faible masse moléculaire. Le filtrat est alors soumis au mode opératoire de 3.1.
La différence entre les deux mesurages obtenus en 3.1 et 3.2 est multipliée par un facteur et donne ainsi la teneur
en amidon de l’échantillon.
NOTE - Les paramètres clés de cette méthode sont la durée et la température de l’hydrolyse, ainsi que le bon usage et
l’étalonnage correct du potarimètre. La méthode a donc été conçue de sorte à permettre une agitation constante du bain d’eau
dont il convient de choisir le volume de manière à assurer une montée rapide en temperature et une stabilisation des
conditions de température.
4 Réactifs
Sauf indication différente, utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, et de l’eau de qualité 2,
conformément à I’ISO 3696.
0 ISO
Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 7,7 mol/l.
4.1
1,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 100 ml.
Diluer 63,7 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
4.2 Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 0,309 mol/l.
1 ,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 1 000 ml.
Diluer 256 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
NOTE - Vérifier la concentration à l’aide d’une solution d’hydroxyde de sodium [C(NaOH) = 0,l molA] et du rouge de méthyle
comme indicateur: il convient que 10 ml de HCI réagissent avec 30,94 ml de NaOH à 0,l mol/l.
4.3 Éthanol dilué, à 40 % (V/V) (pzo = 0,948 g/ml).
4.4 Solution de Carrez 1
Mettre en solution dans de l’eau 10,6 g d’hexacyanoferrate(I1) de potassium trihydraté [K4[(Fe(CN),],3H,0].
Compléter à 100 ml avec de l’eau.
4.5 Solution de Carrez II
Mettre en solution dans de l’eau 21,9 g d’acétate de zinc dihydraté [Zn(CH&O0),,2H,O] et 3 g d’acide acétique
cristallisable. Compléter à 100 ml avec de l’eau.
5 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et, en particulier, ce qui suit.
5.1 Fioles jaugées, de 100 ml.
5.2 Bain-marie bouillant agité ou bain-marie bouillant équipé d’un agitateur magnétique.
5.3 Polarimètre, réglé à une longueur d’onde de 589,3 nm, équipé de tubes de 200 mm.
5.4 Balance analytique, capable de peser à 0,001 g près.
6 Préparation de l’échantillon pour essai
Si la taille de l’échantillon pour laboratoire dépasse 05 mm, broyer l’échantillon afin qu’il passe au travers d’un tamis
de 05 mm d’ouverture de maille. Homogénéiser l’échantillon pour essai ainsi préparé.
7 Mode opératoire
Effectuer les pesées à 0,001 g près (voir 5.4).
7.1 Détermination de la rotation optique d’une prise d’essai totale
7.1.1 Peser 2,5 g + 0,05 g d’échantillon pour essai (ml) et transférer dans une fiole jaugée (5.1). Ajouter 25 ml
d’acide chlorhydrique dilué (4.2) et agiter pour répartir l’échantillon pour essai de façon uniforme. Ajouter encore
25 ml d’acide chlorhydrique dilué (4.2).
7.1.2 Plonger la fiole dans le bain-marie bouillant (5.2) et agiter en continu ou plonger la fiole dans le bain-marie
bouillant équipé d’un agitateur magnétique et remuer à faible vitesse.
7.1.3 Laisser la fiole 15 min + 5 s dans le bain-marie et arrêter d’agiter ou de remuer juste avant de la retirer du
bain-marie. Ajouter immédiatement 30 ml d’eau froide et refroidir rapidement sous l’eau courante à 20 OC k 2 OC.

0 ISO ISO 10520: 1997(F)
7.1.4 Ajouter 5 ml de solution de Carrez 1 (4.4) et agiter pendant 1 min.
7.1.5 Ajouter 5 ml de solution de Carrez II (4.5) et agiter pendant 1 min.
7.1.6 Compléter au volume avec de l’eau, homogénéiser et filtrer sur un entonnoir garni d’un papier filtre approprié.
Si le filtrat n’est pas parfaitement clair, répéter les étapes depuis 7.1 .l avec 10 ml de chacune des deux solutions
de Carrez.
7.1.7 Mesurer la rotation optique (a,) de la solution dans un tube de 200 mm à l’aide du polarimètre (5.3).
7.2 Détermination de la rotation optique des substances solubles dans I’éthanol à 40 % (WV)
7.2.1 Peser 5 g + 0,l g d’échantillon pour essai (m2) et transférer dans une fiole jaugée de 100 ml (5.1). Ajouter à
la fiole environ 80 ml d’éthanol dilué (4.3). Laisser la fiole reposer pendant 1 h à tempér
...

NORME
ISO
INTERNATIONALE
Première édition
1997-09-01
Amidons,et fécules natifs - Dosage
de l’amidon - Méthode polarimétrique
de Ewers
Native starch - Determination of starch content - Ewers polarimetric
method
Numéro de référence
ISO 10520: 1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée ‘aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale. ISO 10520 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 93, Amidon (amidons, fécules),
dérivés et sous-produits.
Les annexes A et B de la présente Norme internationale sont données uniquement à titre d’information.
0 ISO 1997
de reproduction resewes. Sauf prescription différente, aucune
Droits partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque
forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Geneve 20 l Suisse
central @ iso.ch
Internet
x.400 c=ch; a=4OOnet; p=iso; o=isocs; s=central
Imprimé en Suisse
ii
NORME INTERNATIONALE o ISO ISO 10520:1997(F)
Amidons et fécules natifs - Dosage de l’amidon - Méthode
polarimétrique de Ewers
1 Domaine d’application
La présente Norme internationale prescrit une méthode polarimétrique pour le dosage de l’amidon dans les
amidons et fécules natifs, à l’exception de l’amidon à haute teneur en amylose.
Elle n’est pas applicable aux amidons modifiés ou prégélatinés (solubles dans l’eau).
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente Norme internationale. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette a révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
Norme internationale sont invitées a rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 1666:1996, Amidon et fécule - Détermination de l’humidité - Méthode par séchage à /‘étuve.
Spécification et méthodes d’essai.
ISO 3696:1987, Eau pour laboratoire à usage analytique -
3 Principe
La méthode comprend deux étapes de détermination:
3.1 Hydrolyse d’une portion de l’échantillon a l’aide d’acide chlorhydrique dilué, puis clarification et filtration, puis
mesurage de la rotation optique par polarimétrie.
3.2 Reprise d’une deuxiéme portion de l’echantillon avec de I’éthanol à 40 % (V/V) pour en extraire les sucres et
les polysaccharides de faible masse moléculaire. Le filtrat est alors soumis au mode opératoire de 3.1.
La différence entre les deux mesurages obtenus en 3.1 et 3.2 est multipliée par un facteur et donne ainsi la teneur
en amidon de l’échantillon.
NOTE - Les paramètres clés de cette méthode sont la durée et la température de l’hydrolyse, ainsi que le bon usage et
l’étalonnage correct du potarimètre. La méthode a donc été conçue de sorte à permettre une agitation constante du bain d’eau
dont il convient de choisir le volume de manière à assurer une montée rapide en temperature et une stabilisation des
conditions de température.
4 Réactifs
Sauf indication différente, utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, et de l’eau de qualité 2,
conformément à I’ISO 3696.
0 ISO
Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 7,7 mol/l.
4.1
1,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 100 ml.
Diluer 63,7 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
4.2 Acide chlorhydrique dilué, C(H~I) = 0,309 mol/l.
1 ,19 g/ml) avec de l’eau jusqu’à 1 000 ml.
Diluer 256 ml d’acide chlorhydrique (~2~ =
NOTE - Vérifier la concentration à l’aide d’une solution d’hydroxyde de sodium [C(NaOH) = 0,l molA] et du rouge de méthyle
comme indicateur: il convient que 10 ml de HCI réagissent avec 30,94 ml de NaOH à 0,l mol/l.
4.3 Éthanol dilué, à 40 % (V/V) (pzo = 0,948 g/ml).
4.4 Solution de Carrez 1
Mettre en solution dans de l’eau 10,6 g d’hexacyanoferrate(I1) de potassium trihydraté [K4[(Fe(CN),],3H,0].
Compléter à 100 ml avec de l’eau.
4.5 Solution de Carrez II
Mettre en solution dans de l’eau 21,9 g d’acétate de zinc dihydraté [Zn(CH&O0),,2H,O] et 3 g d’acide acétique
cristallisable. Compléter à 100 ml avec de l’eau.
5 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et, en particulier, ce qui suit.
5.1 Fioles jaugées, de 100 ml.
5.2 Bain-marie bouillant agité ou bain-marie bouillant équipé d’un agitateur magnétique.
5.3 Polarimètre, réglé à une longueur d’onde de 589,3 nm, équipé de tubes de 200 mm.
5.4 Balance analytique, capable de peser à 0,001 g près.
6 Préparation de l’échantillon pour essai
Si la taille de l’échantillon pour laboratoire dépasse 05 mm, broyer l’échantillon afin qu’il passe au travers d’un tamis
de 05 mm d’ouverture de maille. Homogénéiser l’échantillon pour essai ainsi préparé.
7 Mode opératoire
Effectuer les pesées à 0,001 g près (voir 5.4).
7.1 Détermination de la rotation optique d’une prise d’essai totale
7.1.1 Peser 2,5 g + 0,05 g d’échantillon pour essai (ml) et transférer dans une fiole jaugée (5.1). Ajouter 25 ml
d’acide chlorhydrique dilué (4.2) et agiter pour répartir l’échantillon pour essai de façon uniforme. Ajouter encore
25 ml d’acide chlorhydrique dilué (4.2).
7.1.2 Plonger la fiole dans le bain-marie bouillant (5.2) et agiter en continu ou plonger la fiole dans le bain-marie
bouillant équipé d’un agitateur magnétique et remuer à faible vitesse.
7.1.3 Laisser la fiole 15 min + 5 s dans le bain-marie et arrêter d’agiter ou de remuer juste avant de la retirer du
bain-marie. Ajouter immédiatement 30 ml d’eau froide et refroidir rapidement sous l’eau courante à 20 OC k 2 OC.

0 ISO ISO 10520: 1997(F)
7.1.4 Ajouter 5 ml de solution de Carrez 1 (4.4) et agiter pendant 1 min.
7.1.5 Ajouter 5 ml de solution de Carrez II (4.5) et agiter pendant 1 min.
7.1.6 Compléter au volume avec de l’eau, homogénéiser et filtrer sur un entonnoir garni d’un papier filtre approprié.
Si le filtrat n’est pas parfaitement clair, répéter les étapes depuis 7.1 .l avec 10 ml de chacune des deux solutions
de Carrez.
7.1.7 Mesurer la rotation optique (a,) de la solution dans un tube de 200 mm à l’aide du polarimètre (5.3).
7.2 Détermination de la rotation optique des substances solubles dans I’éthanol à 40 % (WV)
7.2.1 Peser 5 g + 0,l g d’échantillon pour essai (m2) et transférer dans une fiole jaugée de 100 ml (5.1). Ajouter à
la fiole environ 80 ml d’éthanol dilué (4.3). Laisser la fiole reposer pendant 1 h à tempér
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