ISO 15141-1:1998

Foodstuffs — Determination of ochratoxin A in cereals and cereal products — Part 1: High performance liquid chromatographic method with silica gel clean up

Produits alimentaires — Dosage de l'ochratoxine A dans les céréales et produits dérivés — Partie 1: Méthode par chromatographie liquide haute performance comprenant une étape d'extraction par chromatographie sur gel de silice

General Information

• Status: Withdrawn
• Publication Date: 21-Oct-1998
• Withdrawal Date: 21-Oct-1998
• ICS: 67.060 - Cereals, pulses and derived products
• Technical Committee: ISO/TC 34/SC 4 - Cereals and pulses
• Drafting Committee: ISO/TC 34/SC 4 - Cereals and pulses
• Current Stage: 9599 - Withdrawal of International Standard
• Completion Date: 24-Jul-2018

Relations

• Revised: ISO 15141:2018 - Cereals and cereal products — Determination of ochratoxin A — High performance liquid chromatographic method with immunoaffinity column cleanup and fluorescence detection
• Effective Date: 14-Dec-2013
• Consolidates: ISO 7194:1983 - Measurement of fluid flow in closed conduits — Velocity-area methods of flow measurement in swirling or asymmetric flow conditions in circular ducts by means of current-meters or Pitot static tubes
• Effective Date: 06-Jun-2022

Standards Content (Sample)

INTERNATIONAL ISO
STANDARD 15141-1
First edition
1998-10-15
Foodstuffs — Determination of
ochratoxin A in cereals and cereal
products —
Part 1:
High performance liquid chromatographic
method with silica gel clean up
Produits alimentaires — Dosage de l’ochratoxine A dans les céréales et
produits dérivés —
Partie 1: Méthode par chromatographie liquide haute performance
comprenant une étape d’extraction par chromatographie sur gel de silice
A
Reference number
ISO 15141-1:1998(E)

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ISO 15141-1:1998(E)
Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide
federation of national standards bodies (ISO member bodies). The work of
preparing International Standards is normally carried out through ISO
technical committees. Each member body interested in a subject for which
a technical committee has been established has the right to be represented
on that committee. International organizations, governmental and non-
governmental, in liaison with ISO, also take part in the work. ISO
collaborates closely with the International Electrotechnical Commission
(IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
Draft International Standards adopted by the technical committees are
circulated to the member bodies for voting. Publication as an International
Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting
a vote.
International Standard ISO 15141-1 was prepared by the European
Committee for Standardization (CEN) in collaboration with ISO Technical
Committee TC 34, Agricultural food products, Subcommittee SC 4, Cereals
ans pulses, in accordance with the Agreement on technical cooperation
between ISO and CEN (Vienna Agreement).
Throughout the text of this standard, read “.this European Standard.” to
mean “.this International Standard.”.
ISO 15141 consists of the following parts, under the general title
Foodstuffs — Determination of ochratoxin A in cereals and cereal products:
— Part 1: High performance liquid chromatographic method with silica
gel clean up
— Part 2: High performance liquid chromatographic method with
bicarbonate clean up
Annexes A and B of this part of ISO 15141 are for information only.
©  ISO 1998
All rights reserved. Unless otherwise specified, no part of this publication may be reproduced
or utilized in any form or by any means, electronic or mechanical, including photocopying and
microfilm, without permission in writing from the publisher.
International Organization for Standardization
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Printed in Switzerland
ii

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ISO ISO 15141-1:1998(E)
Contents
Foreword .iii
1 Scope . 1
2 Normative references. 1
3 Principle . 1
4 Reagents . 1
5 Apparatus and equipment . 3
6 Procedure . 4
7 Calculation. 6
8 Precision . 7
9 Test report . 7
Annex A (informative) Precision data . 8
Annex B (informative) Bibliography. 9
Foreword
The text of EN ISO 15141-1:1998 has been prepared by Technical Committee CEN/TC 275 "Food
analysis - Horizontal methods", the secretariat of which is held by DIN, in collaboration with
Technical Committee ISO/TC 34 "Agricultural food products".
This European Standard shall be given the status of a national standard, either by publication of
an identical text or by endorsement, at the latest by April 1999, and conflicting national standards
shall be withdrawn at the latest by April 1999.
This European Standard „Foodstuffs - Determination of ochratoxin A in cereal and cereal
products“ consists of two parts:
Part 1: High performance liquid chromatographic method with silica gel clean up
Part 2: High performance liquid chromatographic method with bicarbonate clean up
According to the CEN/CENELEC Internal Regulations, the national standards organizations of the
following countries are bound to implement this European Standard: Austria, Belgium, Czech
Republic, Denmark, Finland, France, Germany, Greece, Iceland, Ireland, Italy, Luxembourg,
Netherlands, Norway, Portugal, Spain, Sweden, Switzerland and the United Kingdom.
iii

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ISO ISO 15141-1:1998(E)
1 Scope
This European Standard specifies a method for the determination of ochratoxin A at levels greater
than 0,4 μg/kg.
The method has been successfully validated in 2 interlaboratory studies according to ISO
5725:1996 [1] on wheat whole meal containing 0,4 μg/kg and 1,2 μg/kg of ochratoxin A.
NOTE: Numerous laboratory experiences have shown that this method is also applicable to
cereals, dried fruits, oilseeds, pulses, wine, beer, fruit juices and raw coffee, see [2], [3], [4].
2 Normative references
This draft European Standard incorporates by dated or undated reference, provisions from other
publications. These normative references are cited at the appropriate places in the text and the
publications are listed hereafter. For dated references, subsequent amendments to or revisions of
any of these publications apply to this draft European Standard only when incorporated in it by
amendment or revision. For undated references the latest edition of the publication referred to
applies.
EN ISO 3696:1995 Water for analytical laboratory use - Specification and test methods
(ISO 3696:1987).
3 Principle
Ochratoxin A (OTA) is extracted with toluene after acidification with hydrochloric acid and after
the ionic strength has been increased by adding magnesium chloride. The extract is purified using
a mini silica gel column and ochratoxin A is determined by high performance liquid
chromatography (HPLC) on a reversed phase column and identified and modified by fluorescence.
The result is verified, if required, by derivatization with boron trifluoride in methanolic solution [5],
[6].
WARNING: Ochratoxin A causes kidney and liver damage and is a probable carcinogen.
Observe appropriate safety precautions [7] for handling such compounds and in particular
avoid handling in dry form as the electrostatic nature can result in dispersion and inhalation.
Glassware can be decontaminated with 4 % sodium hypochlorite solution. Attention is drawn
to the statement made by the International Agency for Research on Cancer (WHO) [8], [9].
4 Reagents
During the analysis, unless otherwise stated, use only reagents of recognized analytical grade and
only distilled water or water of grade 1 according to EN ISO 3696. Solvent shall be of quality for
HPLC analysis.
4.1 Sodium sulfate, anhydrous
4.2 Glacial acetic acid ϕ(CH COOH) ≈ 98 %
3
4.3 Solution of hydrochloric acid c(HCl) = 2 mol/l
4.4 Magnesium chloride solution c(MgCl ) = 0,4 mol/l
2
4.5 Acetonitrile
4.6 Toluene
1

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ISO 15141-1:1998(E) ISO
4.7 n-Hexane
4.8 Dichloromethane
4.9 Acetone
4.10 Methanol
4.11 Solvent mixture I: toluene (4.6) and glacial acetic acid (4.2) 99+1 parts per volume (V+V)
4.12 Solvent mixture II: acetone (4.9) and toluene (4.6) 5+95 (V+V)
4.13 Solvent mixture III: toluene (4.6) and glacial acetic acid (4.2) 90+10 (V+V)
4.14 Mobile phase
Mix 99 volume parts of acetonitrile (4.5) with 99 volume parts of water and 2 volume parts of
glacial acetic acid (4.2) and degas this solution before use.
4.15 Boron trifluoride
4.16 Boron trifluoride in methanol solution, ρ(BF ) = 14 g/100 ml
3
WARNING: Use a well maintained fume hood. Avoid contact with skin, eyes, and
respiratory tract.
4.17 Ochratoxin A, in crystal form or as a film in ampoules
4.18 Ochratoxin A stock solution
Dissolve 1 mg of the ochratoxin A (crystals) (4.17) or the contents of 1 ampoule (if ochratoxin A
has been obtained as a film) in solvent mixture I (4.11) to give a solution containing approximately
20 μg/ml to 30 μg/ml of ochratoxin A.
To determine the exact concentration, record the absorption curve between a wavelength of
300 nm and 370 nm in 5 nm steps in a 1 cm quartz cell (5.5) with solvent mixture I (4.11) as
reference. Identify the wavelength for maximum absorption by recording in 1 nm steps around the
maximum as reference. Calculate the mass concentration of ochratoxin A, ρ , in micrograms per
OTA
millilitre of solution using equation 1:
M× 100
r =×A (1)
OTA max
kd×
where
A is the absorption determined at the maximum of the absorption curve (here: at 333 nm);
max
M is the relative molecular mass of ochratoxin A (M = 403 g/mol);
κ is the molar absorption coefficient of ochratoxin A, in solvent mixture I
2
(here: 544 m /mol);
δ is the path length of the cell in centimetres.
4.19 Ochratoxin A standard solution ρ = 1 μg/ml
OTA
Evaporate under a nitrogen flow 1 ml of the stock solution (4.18) or the aliquot portion which is
2

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equivalent to an absolute amount of 100 μg of ochratoxin A to dryness and dilute to 100 ml with
the mobile phase (4.14).
This solution can be stored in a refrigerator at 4 ºC. Stability shall be checked.
4.20 Ochratoxin A calibration solutions
Pipette suitable volumes of ochratoxin A standard solution (4.19), e.g. 1 ml, 2,5 ml, 4 ml and 5 ml
into e.g. a 100 ml volumetric flask (5.12) and dilute to the mark with the mobile phase (4.14). The
amount of ochratoxin A in the calibration solutions should cover the range of 0,2 ng to 1,0 ng per
20-μl-injection volume.
4.21 Sodium hypochlorite solution, ρ(NaOCl) = 4 g/100 ml
5 Apparatus and equipment
Usual laboratory equipment and, in particular, the following:
5.1 Laboratory mill, suitable to grind to 1 mm
5.2 Rotary evaporator, with a water bath capable of being controlled between 20 ºC and 50 ºC
5.3 Mechanical shaker
5.4 Spectrometer, suitable for measurement at wavelengths of 300 nm up to 370 nm, having a
spectral band width of not more than ± 2 nm
5.5 Quartz cells, with 1 cm optical path length and no significant absorption between wavelengths
of 300 nm and 370 nm
5.6 Centrifuge tubes, e.g. of capacity 250 ml, plastic made of high density polyethylene (HDPE),
with screw cap
5.7 Cooling centrifuge, preferably a refrigerated centrifuge, capable of producing a gravitational
force of at least 3500 g at the base of the centrifuge tubes (5.6)
1
5.8 Solid phase extraction columns, e.g. SEP-PAK ) disposable silica gel
After the pack has been opened, condition at 105 ºC for 2 h and store over activated silica gel with
moisture indicator. Before use, wash with 10 ml of toluene (4.6). Check the recovery with each new
batch. In the case of use of SEP-PAK columns, the cartridges have the following specification:
- mean mass of the packing material: 690 mg
- pore size: 12,5 nm
- particle size: 55 μm to 105 μm
in a 3 ml polypropylene tube.
5.9 Solvent containers, such as syringes, e.g. of 50 ml capacity with central opening and
stop-cock

1
) SEP PAK is an example of a suitable product available commercially. This
information is given for the convenience of users of this Standard and does not constitute an
endorsement by CEN of these products.
3

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5.10 Pear-shaped flasks, 50 ml, with ground glass joint
5.11 Separating funnel, 50 ml
5.12 Volumetric flask, 100 ml
5.13 Membrane filter for aqueous solutions, made of polytetrafluoroethylene (PTFE), with a
diameter of 4 mm and a pore size of 0,45 μm
5.14 Sieve, with an aperture size of not more than 1 mm
5.15 Vials with crimped caps or screw cap vials
5.16 Microsyringe, of capacity 500 μl
5.17 HPLC apparatus, comprising the following
5.17.1 High performance liquid chromatograph, eluent reservoir, a pump, an injection system, a
fluorescence detector with variable wavelength setting and a data processing, e.g. an integrator
with plotter.
® 2
5.17.2 Analytical reversed phase HPLC separating column, C , e.g. Lichrospher 100
...

NORME ISO
INTERNATIONALE 15141-1
Première édition
1998-10-15
Produits alimentaires — Dosage de
l’ochratoxine A dans les céréales et
produits dérivés —
Partie 1:
Méthode par chromatographie liquide haute
performance comprenant une étape
d’extraction par chromatographie sur gel
de silice
Foodstuffs — Determination of ochratoxin A in cereals and cereal
products —
Part 1: High performance liquid chromatographic method with silica gel
clean up
A
Numéro de référence
ISO 15141-1:1998(F)

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ISO 15141-1:1998(F)
Avant-propos
L'ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération
mondiale d'organismes nationaux de normalisation (comités membres de
l'ISO). L'élaboration des Normes internationales est en général confiée aux
comités techniques de l'ISO. Chaque comité membre intéressé par une
étude a le droit de faire partie du comité technique créé à cet effet. Les
organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales,
en liaison avec l'ISO participent également aux travaux. L'ISO collabore
étroitement avec la Commission électrotechnique internationale (CEI) en
ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques
sont soumis aux comités membres pour vote. Leur publication comme
Normes internationales requiert l'approbation de 75 % au moins des
comités membres votants.
La Norme internationale ISO 15141-1 a été élaborée par le Comité
européen de normalisation (CEN) en collaboration avec le comité techni-
que ISO/TC 34, Produits agricoles alimentaires, sous-comité SC 4,
Céréales et légumineuses, conformément à l'Accord de coopération
technique entre l'ISO et le CEN (Accord de Vienne).
Tout au long du texte de la présente partie de l'ISO 15141, lire «.la
présente norme européenne.» avec le sens de «.la présente partie de
l'ISO 15141.».
L'ISO 15141 comprend les parties suivantes, présentées sous le titre général
Produits alimentaires — Dosage de l'ochratoxine A dans les céréales et
produits dérivés:
—
Partie 1: Méthode par chromatographie liquide haute performance
comprenant une étape d'extraction par chromatographie sur gel de
silice
— Partie 2: Méthode par chromatographie liquide haute performance
comprenant une étape d'extraction par une solution de bicarbonate
Les annexes A et B de la présente partie de l’ISO 15141 sont données
uniquement à titre d’information.
©  ISO 1998
Droits de reproduction réservés. Sauf prescription différente, aucune partie de cette publi-
cation ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun pro-
cédé, électronique ou mécanique, y compris la photocopie et les microfilms, sans l'accord
écrit de l'éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 • CH-1211 Genève 20 • Suisse
Internet [e-mail]
Imprimé en Suisse
ii

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ISO ISO 15141-1:1998(F)
Sommaire
Avant-propos.iii
1 Domaine d'application.1
2 Références normatives.1
3 Principe .1
4 Réactifs.1
5 Appareillage .3
6 Mode opératoire.5
7 Calculs.8
8 Fidélité.9
9 Rapport d'essai .9
Annexe A (informative)  Données de fidélité .10
Annexe B (informative)  Bibliographie .11
Avant-propos
Le texte du EN ISO 15141-1:1998 a été élaboré par le Comité Technique CEN/TC 275 "Analyse
des produits alimentaires - Méthodes horizontales"dont le secrétariat est tenu par le DIN, en
collaboration avec le Comité Technique ISO/TC 34 "Produits agricoles alimentaires".
Cette norme européenne devra recevoir le statut de norme nationale, soit par publication d'un
texte identique, soit par entérinement, au plus tard en avril 1999, et toutes les normes nationales
en contradiction devront être retirées au plus tard en avril 1999.
La présente norme européenne “Produits alimentaires - Dosage de l’ochratoxine A dans les
céréales et produits dérivés” se compose de deux parties:
partie 1: Méthode par chromatographie liquide haute performance comprenant
une étape d'extraction par chromatographie sur gel de silice
partie 2: Méthode par chromatographie liquide haute performance comprenant
une étape d’extraction par une solution de bicarbonate
Selon le Règlement Intérieur du CEN/CENELEC, les instituts de normalisation nationaux des pays
suivants sont tenus de mettre cette norme européenne en application: Allemagne, Autriche,
Belgique, Danemark, Espagne, Finlande, France, Grèce, Irlande, Islande, Italie, Luxembourg,
Norvège, Pays-Bas, Portugal, République Tchèque, Royaume-Uni, Suède et Suisse.
iii

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ISO ISO 15141-1:1998(F)
1 Domaine d'application
La présente norme européenne décrit une méthode de détermination de la teneur en
ochratoxine A supérieure à 0,4 μg/kg. La méthode a été validée selon la norme ISO 5725:1986 [1]
par deux analyses interlaboratoires sur de la farine de blé contaminée à 0,4 μg/kg et 1,2 μg/kg en
ochratoxine A.
NOTE : D'après plusieurs laboratoires, cette méthode est également applicable aux
céréales, fruits secs, graines oléagineuses, légumineuses, au vin, à la bière, aux jus de fruits
et au café [2], [3], [4].
2 Références normatives
Cette norme européenne comporte par référence datée ou non datée des dispositions d'autres
publications. Ces références normatives sont citées aux endroits appropriés dans le texte et les
publications sont énumérées ci-après. Pour les références datées, les amendements ou révisions
ultérieurs de l'une quelconque de ces publications ne s'appliquent à cette norme européenne que
s'ils y ont été incorporés par amendement ou révision. Pour les références non datées, la dernière
édition de la publication à laquelle il est fait référence s'applique.
EN ISO 3696 Eau pour laboratoire à usage analytique - Spécification et méthodes
d'essai (ISO 3696:1987)
3 Principe
L'ochratoxine A est extraite par le toluène, après acidification à l'acide chlorhydrique et après
augmentation de la force ionique par addition de chlorure de magnésium. L'extrait est purifié sur
une mini colonne de gel de silice ; l'ochratoxine est séparée par chromatographie liquide haute
performance sur une colonne phase inverse puis identifiée et quantifiée par fluorescence. La
confirmation du résultat peut se réaliser, si nécessaire, par dérivation au trifluorure de bore en
solution méthanolique [5], [6].
AVERTISSEMENT: L'ochratoxine A provoque des lésions au niveau des reins et du foie et
elle est probablement cancérigène. Respecter les précautions de sécurité [7] lors des
manipulations de ce produit ; éviter notamment toute manipulation du produit sous une
forme sèche, du fait de sa nature électrostatique qui peut occasionner une dispersion et
une inhalation. Il convient de décontaminer la verrerie avec une solution d'hypochlorite de
sodium à 4 %. Se référer également aux conclusions du Centre International de Recherche
sur le Cancer de l'OMS [8], [9].
4 Réactifs
Sauf indication différente, utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, et de
l'eau de qualité 1, conformément à l'EN ISO 3696.
Les solvants doivent être de qualité pour CLHP.
4.1 Sulfate de sodium, anhydre
4.2 Acide acétique glacial, φ (CH COOH) ~ 98 %.
3
4.3 Solution d'acide chlorhydrique c (HCl) = 2 mol/l.
1

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ISO 15141-1:1998(F) ISO
4.4 Solution de chlorure de magnésium c(MgCl ) = 0,4 mol/l.
2
4.5 Acétonitrile
4.6 Toluène
4.7 N-hexane
4.8 Dichlorométhane
4.9 Acétone
4.10 Méthanol
4.11 Mélange de solvants I : toluène (4.6) et acide acétique (4.2) 99 + 1 (V + V).
4.12 Mélange de solvants II : acétone (4.9) et toluène (4.6) 5 + 95 (V + V).
toluène (4.6) et acide acétique (4.2) 90 + 10 (V + V).
4.13 Mélange de solvants III :
4.14 Phase mobile pour CLHP
Mélanger 99 volumes d'acétonitrile (4.5) à 99 volumes d'eau et 2 volumes d'acide acétique (4.2).
Dégazer cette solution avant utilisation.
4.15 Trifluorure de bore
4.16 Trifluorure de bore en solution méthanolique, ρ (BF ) = 14 g/100 ml.
3
ATTENTION ! Utiliser une hotte d'extraction adéquate. Éviter le contact avec la peau, les
yeux et les voies respiratoires.
4.17 Ochratoxine A, sous forme de cristaux ou de film lyophilisé.
4.18 Solution mère d'ochratoxine A
Dissoudre 1 mg d'ochratoxine A (cristaux) (4.17) ou le contenu d'une ampoule (si l'ochratoxine A
est sous forme de film) dans le mélange de solvants I (4.11) pour obtenir une solution
contenant environ 20 μg/ml à 30 μg/ml d'ochratoxine A.
Pour déterminer la concentration exacte de la solution mère, enregistrer à l'aide d'un spectromètre
le spectre d'absorption de l'ochratoxine A entre 300 nm et 370 nm par pas de 5 nm, avec le
mélange de solvants I comme solution de référence, en utilisant des cuves en quartz (5.5) de
1 cm de côté. Calculer la concentration ρ en ochratoxine A, exprimée en microgrammes par
OTA
millilitre, à l'aide de l'équation 1 :
AM××
100
max
r = (1)
OTA
kd×
2

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ISO ISO 15141-1:1998(F)
où :
A est l'absorbance déterminée au maximum de la courbe d'absorption (ici, à : 333 nm) ;
max
M
est la masse molaire de l'ochratoxine A (M = 403 g/ mol) ;
est le coefficient d'absorption molaire de l'ochratoxine A, dans le mélange de
k
solvants I (ici : 544 m²/mol) ;
est la longueur du trajet optique, en centimètres.
δ
4.19 Solution étalon d'ochratoxine A ρ = 1 μg/ml.
OTA
Évaporer à sec sous courant d'azote 1 ml de la solution-mère (4.18) ou une aliquote équivalant
à 100 μg d'ochratoxine, en valeur absolue, puis reprendre le résidu dans 100 ml de phase mobile
(4.14).
Cette solution peut être stockée dans un réfrigérateur à 4 °C. Sa stabilité doit être vérifiée.
4.20 Solutions d'étalonnage d'ochratoxine A
Pipeter des volumes adéquats de la solution étalon d’ochratoxine A (4.19), par exemple 1 ml,
2,5 ml, 4 ml et 5 ml dans une fiole jaugée de 100 ml (5.12), et compléter jusqu'au trait de jauge
avec de la phase mobile (4.14). Les teneurs en ochratoxine A des solutions d'étalonnage doivent
recouvrir la gamme de 0,2 ng à 1,0 ng par volume de 20 μl d'injection.
4.21 Solution d'eau de Javel , ρ(NaOCl) = 4 g/100 ml.
5 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et, en particulier :
5.1 Broyeur de laboratoire, équipé pour broyer jusqu'à 1 mm.
5.2 Évaporateur rotatif, avec bain d'eau, pouvant être contrôlé entre 20 °C et 50 °C.
5.3 Agitateur mécanique
5.4 Spectromètre, pouvant enregistrer des spectres entre 300 nm et 370 nm, d'une largeur de
bande spectrale ne dépassant pas ± 2 nm.
5.5 Cuves en quartz, d'une longueur de trajet optique d'1 cm et sans absorption significative
entre 300 nm et 370 nm.
5.6 Tubes à centrifuger, en plastique de polyéthylène haute densité (HDPE), d'une capacité
de 250 ml, avec bouchon fileté.
3

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ISO 15141-1:1998(F) ISO
5.7 Centrifugeuse pouvant refroidir, de préférence réfrigérée, capable de produire une force de
gravité d'au moins 3 500 g à la base des tubes à centrifuger (5.6).
5.8 Colonnes d'extraction en phase solide, en gel de silice, à usage unique, par
1)
exemple SEP-PAK .
Lorsque le paquet a été ouvert, conditionner les colonnes à 105 °C pendant 2 h et entreposer en
présence de gel de silice activé avec indicateur d'humidité. Préalablement à l'utilisation, laver les
colonnes avec 10 ml de toluène (4.6).
Vérifier le rendement à chaque nouveau lot. En cas d'utilisation de micro-colonnes SEP-PAK, les
cartouches doivent avoir les spécifications suivantes :
- poids moyen du support : 690 mg ;
- grosseur des pores : 12,5 nm ;
- granulométrie : de 55 μm à 105 μm ;
dans un tube de polypropylène de 3 ml.
5.9 Réservoir de solvant, constitué par exemple de seringues, d'une capacité de 50 ml, à
embout central.
5.10 Ballons à col rodé d'une capacité de 50 ml.
5.11 Ampoule à décanter, d'une capacité de 50 ml.
5.12 Fiole jaugée, d'une capacité de 100 ml.
en polytétrafluoroéthylène (PTFE), d'un
5.13 Membrane de filtration pour solution aqueuse,
diamètre de 4 mm et d'une porosité de 0,45 μm.
5.14 Tamis, d'une ouverture de maille ne dépassant pas 1 mm.
5.15 Flacons, à bouchon serti ou fileté.
5.16 Micro-seringue, d'une capacité de 500 μl.

1) 
SEP PAK est un exemple de produit approprié disponible sur le marché. Cette information est donnée à
l'intention des utilisateurs de la présente norme et ne signifie nullement que le CEN recommande l'emploi
exclusif du produit ainsi désigné.
4

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ISO ISO 15141-1:1998(F)
5.17 Chaîne de CLHP, comprenant les éléments suivants :
5.17.1 Une chaîne de chromatographie liquide haute performance, composé d'un réservoir de
phase mobile, d'une pompe, d'un système d'injection des échantill
...