ISO/R 605:1967
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UDC 633.3 : 620.1 Ref. NO.: ISOIR 605 - 1967 (E)
IS0
1 N T E R NAT1 ON AL ORGAN I ZATl O N FOR STAN DAR DI ZATl O N
IS0 RECOMMENDATION
R 605
PULSES
METHODS OF TEST
1st EDITION
August 1967
COPYRIGHT RESERVED
The copyright of IS0 Recommendations and IS0 Standards
belongs to IS0 Member Bodies. Reproduction of these
documents, in any country, may be authorized therefore only
of that country, being
by the national standards organization
a member of ISO.
For each individual country the only valid standard is the national standard of that country.
Printed in Switzerland
Also issued in French and Russian. Copies to be obtained through the national standards organizations.
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BRIEF HISTORY
The IS0 Recommendation R 605, Pulses - Methods of Test, was drawn up by Technical
Committee ISO/TC 34, Agricultural Food Products, the Secretariat of which is held by Office
Hongrois de Normalisation (MSZH).
Work on this question by the Technical Committee began in 1959 and led, in 1964, to the
adoption of a Draft IS0 Recommendation.
In June 1964, this Draft IS0 Recommendation (No.793) was circulated to all the IS0
Member Bodies for enquiry. It was approved, subject to a few modifications of an editorial
nature, by the following Member Bodies :
Y
Argentina Greece Romania
Australia Hungary Spain
Canada
India Switzerland
Chile Iran Turkey
Czechoslovakia Israel U.A.R.
Denmark Korea, Rep. of United Kingdom
France New Zealand U.S.S.R.
Germany
Poland
One Member Body opposed the approval of the Draft:
Netherlands.
The Draft IS0 Recommendation was then submitted by correspondence to the IS0
Council, which decided, in August 1967, to accept it as an IS0 RECOMMENDATION.
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ISO/R 605 - 1967 (E)
1 IS0 Recommendation R 605 August 1967 I
PULSES
METHODS OF TEST
1. SCOPE
This IS0 Recommendation describes methods for testing pulses which have not been processed
and are intended for human consumption or for animal feeding stuffs.
2. DETERMINATION OF IMPURITIES
2.1 Preparation of sample
Thoroughly mix the final lot sample obtained according to IS0 Recommendation R ,
Pulses - Sampling, * and reduce it if necessary, by means of an automatic divider or by hand,
to obtain the test portions specified in clause 2.2.
2.2 Test portions
The minimum test portion, for one determination, should be 200 g, except for butter beans
(Phaseolus Iunatus L.) and horse beans (Vicia faba L.) for which it should be 300 g.
If the content of impurities is very small, it may be necessary to increase considerably the
test portion.
2.3 Procedure
Separate the test portion into component groups in order to obtain information on the use
for which the lot is suitable.
Generally the test portion is separated into five groups, as follows:
(I) seeds typical of the species and variety;
(2) seeds typical of the species but of another variety;
(3) defective seeds belonging to the same species;
(4) organic impurities;
(5) inorganic impurities.
2.3.1 Seeds typical of the species and variety. This group includes all the intact sound seeds,
those with a cracked or injured seed-coat, seeds slightly infested by insects, and broken
seeds larger than one half their original size.
Each country is permitted to subdivide this group if desired.
2.3.2 Seeds typical of the species but of another variety. This group includes seeds of varieties
which differ significantly in shape, size, colour or appearance.
2.3.3 Defective seeds belonging to the same species. This group includes broken, bitten and
injured seeds equal to, or less than, one half their original size; seeds visibly damaged by
insects ; shrivelled, unripe, germinated seeds ; rotten, mouldy and diseased seeds.
2.3.4 Organic impurities. This group includes seed-coats, parts of stems, pods, leaves, etc.,
other crop seeds and weed seeds.
2.3.5 Inorganic impurities. This group includes earth, sand, dust, stones, etc.
* At present Draft IS0 Recommendation No. 1235.
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IÇO/R 605 - 1967 (E)
3. DETERMINATION OF SIZE
(of pulses intended for human consumption)
Carry out the determination of size on material falling within the groups described in clauses
2.3.1 and 2.3.2.
According to the species of pulse, use either sieves with round holes (for example, for peas and
lentils) or with suitable elongated holes (for example, for beans).
4. DETERMINATION OF THE MASS OF 1000 GRAINS
Carry out the determination as described in IS0 Recommendation R 520, Cereals and Pulses -
Determination of the Mass of IO00 Grains.
5. TESTS FOR PRESENCE OF FOREIGN ODOURS
5.1 This examination should be carried out as soon as possible after sampling, either on the
sample in its original condition or on the ground sample.
Spread the sample and smell it. If no strong foreign odour is observed, seal the sample again
for 24 hours and then check it anew. The sample may be examined also during the grinding
If after these operations no foreign odour can be detected with certainty, put
operation.
about 3 to 5 g of the ground seed into a flask of 50 to 100 ml capacity. Cautiously moving
the open flask over a flame or repeatedly shaking it in a water-bath, examine the sample at
a temperature not higher than 60 OC.
5.2 A rapid method (enhancing the development of the odour) is to put a small quantity of the
product in a beaker, pour in some warm water (60 to 70 OC), cover, after 2 or 3 minutes
decant the water and note whether foreign odours are present.
6. TESTS FOR INFESTATION BY INSECTS
The presence of insect pests, especially adults or larvae of the house moth type (e.g. Endrosis or
Hofmannophila species) or Bruchid species, either on sacks or inside the bulk, should be noted.
Examine for infestation by the X-ray method described in IS0 Recommendation R
, *
Cereals and Pulses - Method of Test for Infestation by X-ray Examination. If this is not possible,
use one of the methods described below, which are strictly qualitative.
(I) Test for visible infestation,
(2) Test for infestation by Bruchid beetles on peas by flotation,
(3) Test for infestation by Bruchid beetles on peas by a chemical procedure.
6.1 Test for visible infestation
Scatter part of the laboratory sample on a warm plate (about 40 OC) and cover immediately
with a bell jar in order to prevent the escape of the beetles. In warm climates it may be
advisable to cool the sample and then to sieve it quickly through a sieve of aperture
2 mm. Thus, the adult insects can easily be collected in a test tube and, if it is desired to know
whether living beetles are present, the closed test tube can be warmed for a few minutes by
hand.
If no living insects are observed within 15 minutes, open if possible 100 of the obviously
infested seeds to check the possible presence of living or dead beetles and larvae. Examine
the samples also for lace (filet) produced by the larvae of the house moth and related species.
* At present Draft IS0 Recommendation No. 1236.
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ISO/R 605 - 1967 (E]
I
6.2 Test for infestation by Bruchid beetles on peas by flotation
6.2.1 Preparation of salt solution. Use a solution of sodium chloride or of ammonium nitr
...
II
CDU 633.3 : 620.1 Réf. NO : ISO/R 605 - 1967 (F)
IS0
D E NORM ALI SAT I ON
ORGAN I SAT I ON I NT ERN AT I ON ALE
R E C O M M A N D AT1 O N
I S O
R 605
LÉGUMINEUSES
MÉTHODES D’EXAMEN
i*re ÉDITION
Août 1967
REPRODUCTION INTERDITE
Le droit de reproduction des Recommandations IS0 et des Normes
IS0 est la propriété des Comités Membres de I’ISO. En consé-
quence, dans chaque pays, la reproduction de ces documents ne
peut être autorisée que par l’organisation nationale de normali-
sation de ce pays, membre de I’ISO.
Seules les normes nationales sont valables dans leurs pays respectifs.
Imprimé en Suisse
Ce document est également édité en anglais et en russe. I1 peut être obtenu auprès des organisations
nationales de normalisation.
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HISTORIQUE
La Recommandation ISO/R 605, Légumineuses - Méthodes d’examen, a été élaborée par
le Comité Technique ISO/TC 34, Produits agricoles alimentaires, dont le Secrétariat est assuré par
l’Office Hongrois de Normalisation (MSZH).
Les travaux relatifs à cette question furent entrepris par le Comité Technique en 1959 et
aboutirent en 1964 à l’adoption d’un Projet de Recommandation ISO.
En juin 1964, ce Projet de Recommandation IS0 (NO 793) fut soumis à l’enquête de tous
les Comités Membres de 1’1SO. 11 fut approuvé, sous réserve de quelques modifications d’ordre
rédactionnel, par les Comités Membres suivants :
Allemagne France R.A.U.
Argentine Grèce Roumanie
Australie Hongrie Royaume-Uni
Canada Inde Suisse
Chili Iran Tchécoslovaquie
Israël Turquie
Corée, Rép. de
Danemark Nouvelle- Zélande U. R. S. S
Pologne
Espagne
Un Comité Membre se déclara opposé à l’approbation du Projet:
Pays-Bas
Le Projet de Recommandation IS0 fut alors soumis par correspondance au Conseil de
I’ISO qui décida, en août 1967, de l’accepter comme RECOMMANDATION ISO.
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Recommandation IS0 R 605 Août 1967
LÉGUMINEUSES
MÉTHODES D’EXAMEN
1. OBJET
La présente Recommandation IS0 a pour objet de fixer les méthodes d’examen des graines de
légumineuses non transformées destinées à l’alimentation humaine ou animale.
2. DETERMINATION DE LA TENEUR EN IMPURETÉS
2.1 Préparation de l’échantillon
Bien mélanger l’échantillon pour laboratoire obtenu conformément à la Recommandation
ISO/R , Légumineuses - Echantillonnage*, et le réduire, éventuellement au moyen d‘un
appareil diviseur automatique ou à la main, jusqu’à obtention des prises d’essais spécifiées au
paragraphe 2.2.
2.2 Prises d’essais
Les prises d’essais minimales pour une détermination doivent être de 200 g, à l’exception du
pois du Cap (Phaseolus lunatus L.) et de la fève (Vicia faba L.) pour lesquels elles doivent
300 g.
être de
Dans le cas de très faibles teneurs en impuretés, il peut être nécessaire d’augmenter sensible-
ment la prise d’essai.
2.3 Mode opératoire
Répartir la prise d’essai en groupes de constituants ci-après définis afin de se renseigner sur
l’utilisation appropriée du lot.
En général, on sépare la prise d’essai en cinq groupes comme suit:
1) graines typiques de l’espèce et de la variété;
2) graines typiques de l’espèce, mais d’une autre variété;
3) graines défectueuses appartenant à la même espèce;
4) impuretés organiques ;
5) impuretés non organiques.
2.3.1 Graines typiques de l’espèce et de la variété. Ce groupe comprend toutes les graines non
endommagées, saines, celles qui ont un tégument brisé ou endommagé, celles qui pré-
sentent une légère attaque d’insectes, ainsi que les fragments de graines dont la taille
est supérieure à la moitié de la taille initiale des graines.
Chaque pays est libre de subdiviser ce groupe, s’il le désire.
2.3.2 Graines typiques de l’espèce, mais dune autre variété. Ce groupe comprend les variétés de
graines qui diffèrent entre elles de manière significative par la forme, la taille, la couleur
ou l’aspect.
2.3.3 Graines défectueuses appartenant à la même espèce. Ce groupe comprend les graines
brisées, rongées et endommagées dont la taille est inférieure ou égale à la moitié de la
taille initiale, celles qui sont visiblement endommagées par les insectes, desséchées, pas
encore mûres, les graines aux germes développés, les graines moisies, pourries et malsaines.
2.3.4 Impuretés organiques. Ce groupe comprend les téguments, les parties de tiges, de gousses,
de feuilles, etc., les graines d’autres plantes cultivées et les graines de mauvaises herbes.
2.3.5 Impuretés non organiques. Ce groupe comprend la terre, le sable, la poussière, les pierres,
etc.
* Actuellement Projet de Recommandation IS0 No 1235.
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3. DÉTERMINATION DU CALiBRE
(des graines de légumineuses destinées à l’alimentation humaine)
Effectuer la détermination du calibre sur les matières comprises dans les groupes définis aux
paragraphes 2.3.1 et 2.3.2.
Opérer en utilisant, suivant l’espèce de légumineuses, soit des tamis à trous ronds (par exemple,
pour les pois, les lentilles) soit des cribles à fentes longitudinales appropriées (par exemple, pour
les haricots).
4. DÉTERMINATION DE LA MASSE DE 1000 GRAINES
Effectuer la détermination conformément à la Recommandation ISO/R 520, Céréales et Légumi-
neuses - Détermination de la masse de 1000 grains.
5. RECHERCHES DES ODEURS ETRANGÈRES
5.1 Effectuer cette recherche aussitôt que possible après l’échantillonnage, soit sur le produit tel
quel, soit après l’avoir broyé.
Etaler l’échantillon reçu et le sentir. Si aucune odeur étrangère ne se manifeste de manière
intense, remettre l’échantillon dans l’emballage ; le fermer, attendre 24 heures, puis refaire un
examen. L’échantillon peut aussi être examiné au cours du broyage. Si, après ces opérations,
aucune odeur étrangère ne se manifeste nettement, placer 3 à 5 g de graines broyées dans
un récipient de 50 à 100 ml de capacité. Remuer avec précaution le récipient ouvert sur
une flamme ou le placer dans un bain-marie, en le secouant à plusieurs reprises, et examiner
l’échantillon à une température n’excédant pas 60 OC.
5.2 Une méthode rapide (renforçant le développement de l’odeur), consiste à opérer comme suit:
(60 à 70 OC),
placer une petite quantité du produit dans un bécher, y verser de l’eau chaude
couvrir le bécher et, 2 à 3 minutes après, vider l’eau et noter s’il y a présence d’odeurs
étrangères.
6. RECHERCHE DE L’INFESTATION PAR LES INSECTES
La présence d’insectes, particulièrement d’insectes adultes ou de larves d’insectes du type des
teignes (par exemple, Endrosis ou Hofmannophila species) ou du genre bruche, sur les sacs ou à
l’intérieur du produit, doit être notée.
Rechercher cette infestation par examen aux rayons X selon la méthode décrite dans la Recom-
mandation ISO/R *, Céréales et légumineuses - Méthode de détection de l’infestation au moyen
des rayons X. A défaut, utiliser l’une des trois méthodes décrites ci-après, qui sont uniquement
qualitatives.
1) Recherche de l’infestation visible,
2) Recherche de l’infestation des pois par les bruches, par flottation,
3) Recherche de l’infestation des pois par les bruches au moyen d’un procédé chimique.
6.1 Recherche de l’infestation visible
Etaler une partie de l’échantillon pour laboratoire sur une plaque légèrement chauffée
(environ 40 OC) et couvrir immédiatement avec une cloche en verre pour empêcher les
bruches de s’envoler. Dans les climats chauds, il peut être utile de refroidir l’échantillon et
ensuite de le faire passer rapidement à travers un tamis de 2 mm d’ouverture de maille.
Ainsi, les insectes adultes peuvent être aisément recueillis dans un tube à essai; si on désire
vérifier la présence de bruches vivantes, réchauffer à la main quelques minutes le tube fermé.
Si aucun insecte vivant n’est observé au bout de 15 minutes, ouvrir si possible 100 des
graines manifestement attaquées par les bruches, pour rechercher la présence éventuelle de
bruches vivantes ou mortes et de larves. Rechercher aussi dans l’échantillon la présence de
soies produites par les larves d’insectes du type des teignes.
* Actuellement Projet de Recommandation IS0 No 1236.
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6.2 Recherche de l’infestation des pois par les bruches, par flottation
6.2.1 Préparation de la solution saline. Utiliser une solution de chlorure de sodium ou bien de
nitra
...
Questions, Comments and Discussion
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